Котики вектор: Кот Векторы, 6800+ Кот Бесплатно векторное Изображения в форматах AI, EPS

Содержание

Вектор морских котиков eps svg

ключевые слова

вооруженный
армия
боевой
камуфляж
бой
коммандос
огнестрельное оружие
сила
пловцы
зеленый
пистолет
шлем
пехота
морской
военный
военно-морской
спецназ морские котики
рейнджер
тюлень
снайпер
солдат
специальный
состояния
тактический
войска
униформа
объединенный
война
военное дело
оружие
Вектор морских котиков
eps
svg
Вектор
морских
котиков

DMCA Contact Us

бесплатная загрузка ( eps svg, 3.54MB )

Связанная векторная графика

org/ImageObject»> Символ и логотип морских котиков eps svg ai
Набор векторных ретро морских котиков ai eps svg
Морские животные ai
Набор векторных баннеров морских лент eps
Свободный морской морской образец ai svg
Свободный морской вектор ai svg
Бесплатная коллекция векторных морских котиков ai eps svg
Коллекция морских веревок eps
org/ImageObject»> Морские водоросли Векторный Icon svg eps
Коллекция морских животных eps

Свободный морской морской образец ai svg
Свободный морской морской образец ai svg
Морские растения и водоросли svg ai
Коллекция морских животных eps
Коллекция морских животных eps
Отдых на морском пляже eps
org/ImageObject»> Морские рисованной иллюстрации svg ai eps
Морской логотип якорь значок классический дизайн ai eps
Набор векторных различных морских элементов eps
Набор иконок морских водорослей eps svg

Коллекция морских животных eps
Набор векторных различных морских элементов eps
Морские волны блестящий вектор ai
Иллюстрация различных видов морских животных eps
org/ImageObject»> Свободный морской морской образец svg ai

Морское дно бесплатные векторы svg eps
Симпатичные морские элементы мультфильма ai eps svg
Векторная иллюстрация морской якорь eps
Милый котик в подарочной коробке ко дню святого Валентина svg ai eps
Симпатичные мультяшные морские животные векторная графика eps

Ракушка морского гребешка svg
Коллекция морских животных eps
org/ImageObject»> Морской конек вектор eps
Цветные морские элементы eps
Набор Оружия Морских Котиков Векторная Иллюстрация Плоский ai svg
Силуэты морских животных ai
Бурные морские волны фоны вектор eps
Набор бесшовные ретро военно-морской флот eps
Морская жизнь ai svg eps
Раскраска морской мир вектор шаблон 15 eps
org/ImageObject»> Морские острова пальмы вектор eps
Бесплатные морские гребешки вектор раковины svg eps
Акварельная морская рамка eps
Векторы морских животных ai
Морской логотип корабль море значок классический эскиз ai eps
Морские водоросли Векторный Icon svg eps
Векторные иконки морских путешествий по морскому туризму eps
Военно-морские котики фон вектор eps svg
org/ImageObject»> Морские водоросли Векторный Icon eps svg

Дизайн синий морской значок ai svg

Загрузи больше

СМИ нашли разработчика российской вакцины от CoViD-19. Ему 30, он любит мемы и котиков | Коронавирус

В 24 года вирусолог защитил кандидатскую, а спустя 6 лет спасает мир от пандемии.

Не все герои носят плащи, и, как оказалось, не все учёные выглядят как мудрые седоволосые старцы из фильмов. Отбросив все стереотипы, СМИ выяснили, что главным разработчиком вакцины от коронавируса российского производства оказался обычный 30-летний парень, который любит мемы и котиков.

Ильназ Иматдинов — так зовут человека, который возглавил команду вирусологов из научного центра «Вектор» под Новосибирском. Как сообщает «Комсомольская правда», кандидатскую молодой учёный защитил в 24 года и теперь (спустя шесть лет) пытается защитить мир от смертельного вируса.

Ильназ родился в Татарстане, закончил Ульяновскую государственную сельскохозяйственную академию, а до «Вектора» работал в Федеральном исследовательском центре вирусологии и микробиологии во Владимирской области.

— О своей работе практически никогда не говорит. Предприятие закрытое, почти секретное. Но человек он увлечённый. О том, что он разработчик вакцины, мы сами узнали, посмотрев телевизор,

— рассказали друзья Ильназа.

Сам же вирусолог интервью не даёт — работа не позволяет. Однако некоторую информацию о нём можно узнать из соцсетей. Так, согласно данным из его аккаунта во «ВКонтакте», Ильназ негативно относится к алкоголю и курению, зато интересуется книгами и хорошими людьми. Сам себя он называет невыносимым и неадекватным — прямо как настоящий учёный из голливудских фильмов. Но удивительнее всего то, что его страница буквально забита котиками и научными мемами. Смешные картинки, тематические комиксы и забавные фотографии с котами — вот что нужно современному учёному, чтобы спасти мир.

Фото © Изображение со страницы Ильназа Иматдинова

Лаборатория вирусологии «Вектор» является одним из нескольких десятков разработчиков вакцины от CoViD-19 в мире. В ближайшее время специалисты начнут проводить первые испытания на людях, которые сами вызвались быть добровольцами. Ранее Лайф сообщал, что для разработки вакцины из США в Россию доставили штамм коронавируса.

Умеют ли коты строить регрессию? / Хабр

Доброго времени суток, Хабр! Пора вновь вернуться к задачам оптимизации. На этот раз мы займемся линейной регрессией и разберемся, кто же такие коты — только пушистые домашние

~~мерзавцы~~

животные или еще и неплохой инструмент для решения прикладных задач.

За прошедшее время (а его прошло немало) я немного «причесал» репозиторий, написал более-менее несущие смысл ReadMe, а также провел реструктуризацию проектов. Что изменилось с момента

прошлой статьи

, и каково состояние проекта на данный момент?

в проекте Algebras находятся реализация trait’а алгебры, в котором перечислены все основные операции, которые должны быть реализованы для объекта, наследующего его; кроме того, в данном проекте на текущий момент реализованы вещественная и интервальная алгебры,
в проекте Transformations находятся основные типы преобразований с соответствующими связями; в данном проекте было сделано дополнение свойств преобразований (например, численная дифференциуремость), что пригодится в дальнейшем при реализации алгоритмов оптимизации, использующих градиент,
в проекте Algorithms находятся основные классы алгоритмов; данный проект будет наполняться по мере выделения общих типов алгоритмов (пока здесь есть лишь алгоритм оптимизации вещественнозначных функций),
в проектах Metaheuristic Optimization и Machine Learning хранятся реализации алгоритмов оптимизации и машинного обучения соответственно,
в проекте Tools собраны различные процедуры, необходимые для функционирования работы алгоритмов (например, генераторы случайных чисел в соответствии с распределениями).

Как я и обещал в первой работе, в начале статьи я буду обозначать круг задач, которые будут решаться, и затем останавливаться на каждой более подробно. Ссылки на репозиторий будут приведены в конце.

Итак, в этой работе мы поговорим:

о линейных моделях регрессии,
о способах сведения задачи поиска линейной регрессии к задаче оптимизации,
о метаэвристическом алгоритме глобальной условной оптимизации, моделирующем поведение котов.

Линейные модели регрессии и как их свести к задаче оптимизации

Начнем с формулирования задачи регрессии.

Пусть имеется набор измерений, который удобно представить в виде матрицы:

т.е. каждое измерение

представляется вектором из

. Также имеется набор значений зависимой переменной

Будем работать с простым случаем, когда зависимая переменная является одномерной. Решая задачу регрессии, нужно построить модель, которая с учетом некоторой метрики качества (критерия эффективности) будет реализовывать связь между набором измерений и зависимой переменной, т. е. найти модель

где

— вектор параметров модели, т.ч.

. Очевидно, что задача аппроксимации и регрессии тесно связаны.

Таким образом, если вы экспертно зафиксировали форму желаемой модели, то вся задача сводится к определению значений вектора параметров . Следует отметить, что для машинного обучения действует следующий принцип: чем больше у модели степеней свободы (читай параметров), тем более вероятно, что используемая модель переобучится. В случае же если степеней свободы немного, то есть все шансы, что модель не будет достаточно точной.

В этом плане линейные модели являются, наверное, некоторым переходным звеном. Несмотря на кажущуюся простоту, для многих ситуаций они с достаточно высокой точностью решают задачу регрессии. Тем не менее, при сильной зашумленности данных линейные модели порой нуждаются в искусственном ограничении (регуляризации).

Код общей модели линейной регрессии

trait GeneralizedLinearModel {

  def getWeights(): Vector[Real]

  def apply(v: Vector[Real]): Real = getWeights().  2.0 }
        .reduce(_ + _) / input.length
    }
  }

}

В самом trait’е определены:

метод, возвращающий веса модели регрессии,
apply — метод, рассчитывающий значение зависимой переменной на основе полученного входа,
конвертация к неоднородному преобразованию.

В одноименном объекте имеются

константа, отвечающая за сдвиг,
метрика RSS.

Ordinary Least Squares

Как это принято, начнем с наиболее простой модели и будем ее по-тихоньку усложнять. Итак, в общем случае линейная регрессия задается следующей формулой:

из которой видно, что размерность вектора

равна размерности вектора измерений плюс один. Нулевая компонента называется

смещением

(bias term или intercept term). По аналогии с простой функцией

, где константа

отвечает за смещение графика относительно оси абсцисс.

Таким образом, линейную модель можно выразить через скалярное произведение

Удобно поставить задачу поиска оптимального значения вектора параметров

с помощью

остаточной суммы квадратов

(RSS, residual sum of squares)

При такой постановке задачи становится возможным найти аналитическое решение, которое выражается следующей формулой:

где матрица

получается из матрицы

путем добавления слева столбца, состоящего из единиц.

Как видно из приведенного выше описания, задача оптимизации уже поставлена. Так что в дальнейшем останется лишь применить к ней выбранный алгоритм оптимизации.

Ordinary Least Squares

case class OrdinaryLeastSquaresRegression(w: Vector[Real]) extends GeneralizedLinearModel {

  override def getWeights(): Vector[Real] = w

}

object OrdinaryLeastSquaresRegression {

  class Task(input: Seq[Vector[Real]], output: Seq[Real]) extends General.Task {

    def toOptimizationTask(searchArea: Map[String, (Double, Double)]): (Optimization.Real.Task, InhomogeneousTransformation[Vector[Real], OrdinaryLeastSquaresRegression]) = {
      val vectorToRegressor =
        new InhomogeneousTransformation[Vector[Real], OrdinaryLeastSquaresRegression]((w: Vector[Real]) => OrdinaryLeastSquaresRegression(w))
      val task = new Optimization.Real.Task(
        new Function[Real]((w: Vector[Real]) =>
          GeneralizedLinearModel.Metrics.RSS(vectorToRegressor(w), input, output)), searchArea)
      (task, vectorToRegressor)
    }
  }

}

Ridge & Lasso Regression

В случае если необходимо по тем или иным причинам уменьшить степень вариативности модели без ее структурного изменения, можно использовать регуляризацию, которая накладывает ограничения на параметры модели.

Ridge regression (гребневая регрессия) использует L2 регуляризацию параметров модели:

где

— L2 норма. Параметр

отвечает за сжатие коэффициентов: с увеличением

параметры модели стремятся к нулю. Наглядно это очень хорошо продемонстрировано на

официальном сайте пакета scikit

Как и в случае с простой линейной регрессией для гребневой регрессии имеется возможность аналитически выразить решение:

где

— единичная матрица порядка

, в левом верхнем углу которой находится ноль.

Ridge Regression

class RidgeRegression(w: Vector[Real], alpha: Double) extends OrdinaryLeastSquaresRegression(w) { }

object RidgeRegression {

  class Task(input: Seq[Vector[Real]], output: Seq[Real]) extends General.Task {

    def toOptimizationTask(searchArea: Map[String, (Double, Double)], alpha: Double): (Optimization.Real.Task, InhomogeneousTransformation[Vector[Real], RidgeRegression]) = {
      val vectorToRegressor =
        new InhomogeneousTransformation[Vector[Real], RidgeRegression]((w: Vector[Real]) => new RidgeRegression(w, alpha))
      val task = new Optimization.  2.0).reduce(_ + _)), searchArea)
      (task, vectorToRegressor)
    }
  }

}

Для Lasso Regression постановка задачи похожая, разница заключается в том, что теперь используется L1 регуляризация параметров модели:

где

— L1 норма

Lasso Regression

class LassoRegression(w: Vector[Real], alpha: Double) extends OrdinaryLeastSquaresRegression(w) { }

object LassoRegression {

  class Task(input: Seq[Vector[Real]], output: Seq[Real]) extends General.Task {

    def toOptimizationTask(searchArea: Map[String, (Double, Double)], alpha: Double): (Optimization.Real.Task, InhomogeneousTransformation[Vector[Real], LassoRegression]) = {
      val vectorToRegressor =
        new InhomogeneousTransformation[Vector[Real], LassoRegression]((w: Vector[Real]) => new LassoRegression(w, alpha))
      val task = new Optimization.Real.Task(
        new Function[Real]((w: Vector[Real]) =>
          GeneralizedLinearModel.Metrics.RSS(vectorToRegressor(w), input, output) / (2. 0 * input.length) +
            alpha * w.components.filterKeys(_ != "bias").values.map(Algebra.abs(_)).reduce(_ + _)), searchArea)
      (task, vectorToRegressor)
    }
  }

}

Таким образом, с точки зрения оптимизации, Ridge regression и Lasso Regression отличаются лишь способом постановки задачи минимизации.

Cat Swarm Optimization

Как уже стало ясно из названия, алгоритм имитирует поведение животных семейства кошачьих (в том числе и домашних кошек). Что Вы можете сказать о своем домашнем любимце? Он может отыгрывать роль милого лежебоки (хотя мы на самом деле знаем, какие коварные мысли роятся в его голове), может вообразить себя великим (но осторожным) исследователем, а может просто носиться по квартире за несуществующим (а точнее невидимым вам) соперником. Лежащих и недвижимых словно Великая Китайская стена котов мы оставим в покое, пусть себе отдыхают, а вот на последних двух действиях остановимся подробнее. Для любого алгоритма оптимизации хорошо иметь несколько стадий поиска:

глобального

, в ходе которого мы должны попасть в область притяжения локального экстремума (а в идеале — глобального), и

уточняющего

, в ходе которого мы должны придвинуться из окрестности экстремума ближе к его истинному расположению. Ничего не напоминает? В самом деле, коты, гоняющиеся за незримым врагом, — явные кандидаты на реализацию процедуры глобального поиска, а вот аккуратные исследователи помогут вам найти оптимальное место для отдыха. Эти две эвристики лежат в основе алгоритма

Cat Swarm Optimization

. Для полной картины остается представить, что у вас не один кот, а целая стая. Но так ведь даже лучше, верно?

Псевдокод алгоритма представлен ниже:

Шаг 1. Инициализировать популяцию из N котов. Шаг 2. Определить приспособленность каждого кота на основе его позиции в исследуемом пространстве. Запомнить "лучшего" кота (в терминологии задачи минимизации, ему будет соответствовать наименьшее значение функции). Шаг 3. Переместить котов в соответствии с их процедурой смещения (поиск или погоня). Шаг 4. Заново присвоить котам режимы перемещения в соответствии с параметром MR. Шаг 5. Проверить условие окончания работы. В случае его невыполнения перейти к шагу 2.
Если же постараться формализовать все идеи, то в математическом выражении мы имеем следующие тезисы:

каждый кот ассоциирован с некоторой точкой в исследуемом пространстве,
приспособленность кота — значение оптимизируемой функции в точке, соответствующей его текущему положению,
каждый кот может находиться в одном из двух режимов: поиск или погоня.
итерация алгоритма подразумевает реализацию процесса перемещения в соответствии с тем режимом, в котором находится кот.

Параметры, влияющие на работу алгоритма

class CatSwarmOptimization(numberOfCats: Int, MR: Double,
                           SMP: Int, SRD: Double, CDC: Int, SPC: Boolean,
                           velocityConstant: Double, velocityRatio: Double,
                           generator: DiscreteUniform with ContinuousUniform = Kaimere.Tools.Random.GoRN) extends Algorithm

количество котов (numberOfCats) — чем больше котов, тем дольше время работы алгоритма (если его ограничивать количеством итераций), но и потенциально большая точность найденного ответа,
пропорция котов в режиме поиска и погони (MR) — данный параметр позволяет направлять поиск по той стратегии, которую пользователь считает предпочтительной; например, если вы заведомо знаете окрестность, в которой лежит глобальный оптимум, то логично инициализировать популяцию в этой окрестности и поддерживать большее число котов-исследователей в популяции для уточнения первоначального решения,
количество попыток для режима поиска (SMP) — сколько разных смещений будет производить кот-исследователь; большие значения данного параметра увеличивают время одной итерации, но позволяют увеличить точность определения положения экстремума,
доля смещения для режима поиска (SRD) — доля, на которую кот-исследователь смещается относительно своего текущего положения, большие значений смещают уточняющий поиск в сторону глобального,
количество направлений, по которым ведется поиск (CDC) — данный параметр регулирует количество измерений, которые будут изменять у текущего положения кота, находящегося в режиме поиска; меньшие значения делают поиск покоординатным,
желание остаться на старом месте (SPC) — булева переменная, которая позволяет выбирать, может ли кот-исследователь остаться не текущем месте,
константа скорости (velocityConstant) — определяет степень поворотливости кота во время погони; большие значения быстрее меняют текущий вектор скорости кота,
максимальная скорость (velocityRatio) — все-таки вы в доме хозяин, поэтому в случае если кто-то из котов слишком уж разогнался, то вы вполне можете на него прикрикнуть,
чтобы он притормозил, т. о. данный параметр ограничивает максимальную скорость движения котов.

Итак, что же представляют из себя режимы, в которых могут находиться коты? Тут все просто.

Во время режима поиска из текущего положения генерируются новые возможные положения . Новое положение выбирается выбирается по методу рулетки, где вероятность выборка -го положения определяется по формуле

Для задачи максимизации максимум в числителе следует заменить на минимум.

Теперь немного о том, как реализуется погоня. Чтобы не пугать хозяина, все-таки следует гоняться не за вымышленным врагом, а за вполне реальным — котом, который на данный момент нашел себе лучшее место (его позиция будет обозначаться ). Скорость кота меняется по следующему правилу:

где

— равномерно распределенная случайная величина, а

— константа скорости (та самая, которая отвечает за поворотливость). Новое положение кота рассчитывается следующим образом:

Реализация кота

case class Cat(location: Vector[Real], velocity: Vector[Real])(implicit generator: DiscreteUniform with ContinuousUniform) {

  def getFromSeries[T](data: Seq[T], n: Int, withReturn: Boolean): Seq[T] =
    withReturn match {
      case true => Seq. fill(n)(generator.getUniform(0, data.size - 1)).map(x => data(x))
      case false => data.sortBy(_ => generator.getUniform(0.0, 1.0)).take(n)
    }

  def seek(task: Task, SPC: Boolean, SMP: Int, CDC: Int, SRD: Double): Cat = {

    val newLocations = (if (SPC) Seq(location) else Seq()) ++
      Seq.fill(SMP - (if (SPC) 1 else 0))(location)
        .map { loc =>
          val ratio =
            getFromSeries(task.searchArea.keys.toSeq, CDC, false)
              .map { key => (key, generator.getUniform(1.0 - SRD, 1.0 + SRD)) }.toMap
          (loc * ratio).constrain(task.searchArea)
        }

    val fitnessValues = newLocations.map(task(_)).map(_.value)
    val newLocation =
      if (fitnessValues.tail.forall(_ == fitnessValues.head)) newLocations(generator.getUniform(0, SMP - 1))
      else {
        val maxFitness = fitnessValues.max
        val minFitness = fitnessValues.min
        val probabilities = fitnessValues.map(v => (maxFitness - v) / (maxFitness - minFitness))
        val roulette =
          0. 0 +: probabilities.tail
            .foldLeft(Seq(probabilities.head)) { case (prob, curr) => (curr + prob.head) +: prob }
            .reverse
        val chosen = generator.getUniform(0.0, roulette.last)
        val idChosen = roulette.sliding(2).indexWhere{ case Seq(a, b) => a <= chosen && chosen <= b}
        newLocations(idChosen)
      }
    new Cat(newLocation, newLocation - this.location)
  }

  def updateVelocity(bestCat: Cat, velocityConstant: Double, maxVelocity: Map[String, Double]): Vector[Real] = {
    val newVelocity = this.velocity + (bestCat.location - this.location) * velocityConstant * generator.getUniform(0.0, 1.0)
    Vector(newVelocity.components
      .map { case (key, value) =>
        if (value.value > maxVelocity(key)) (value, Real(maxVelocity(key)))
        if (value.value < -maxVelocity(key)) (value, Real(-maxVelocity(key)))
        (key, value)
      })
  }

  def trace(task: Task, bestCat: Cat, velocityConstant: Double, maxVelocity: Map[String, Double]): Cat = {
    val newVelocity = this. updateVelocity(bestCat, velocityConstant, maxVelocity)
    val newLocation = (location + newVelocity).constrain(task.searchArea)
    new Cat(newLocation, newVelocity)
  }

  def move(mode: Int, task: Task, bestCat: Cat, SPC: Boolean, SMP: Int, CDC: Int, SRD: Double, velocityConstant: Double, maxVelocity: Map[String, Double]): Cat = mode match {
    case 0 => seek(task, SPC, SMP, CDC, SRD)
    case 1 => trace(task, bestCat, velocityConstant, maxVelocity)
  }
}

Теперь, когда все основные моменты алгоритма перечислены, пора уже разобраться, смогут ли коты построить регрессию?

Так умеют ли коты строить регрессию или нет?
Сгенерируем

несколько тестовых наборов данных (в тетрадке также есть расчет с моделей регрессий с помощью scikit):

одномерная линейная зависимость без шума: ,
многомерная линейная зависимость без шума: ,
одномерная линейная зависимость с шумом: ,
многомерная линейная зависимость с шумом: ,

где

— равномерно распределенная случайная величина.

Результаты, полученные с помощью пакета scikit для данных с шумом

Для одномерной линейной зависимости с шумом:

Для многомерной линейной зависимости с шумом:

Видно, что найденные значения достаточно близки к результатам, полученными с помощью scikit.

Заключение

Таким образом, приведенная постановка задачи, несмотря на свою модельность и простоту, позволила познакомиться с метаэвристическим алгоритмом

Cat Swarm Optimization

. При разработке оптимизационных процедур зачастую полезно позаниматься наблюдением за окружающим миром, ведь, как известно,

«природа знает лучше»

Ссылки и литература

Кошка вектор PNG изображения | Кошки, Кошачьи уши, Мультяшный кот Векторы в формате .AI .EPS Хэллоуин украшения

3000 * 3000

1200 * 1200

Вектор маленький Cat

1200 * 1200

милый вектор кота или цветной иллюстрации

1200 * 1200

6 милые кошки дизайн векторных материалов

3072 * 4107

1200 * 1200

* 1200

вектор Cat

2000 * 2000

силуэт страшного черного кота вектор или цветная иллюстрация

1200*1200

милое животное кошка наклейка иллюстратор дизайн вектор

1200 * 1200

силуэт черный тонкий кот вектор или цветные иллюстрации

1200 * 1200

черный кот векторные иллюстрации

1200 * 1200

полный черный кот вектор или цветная иллюстрация

1200 * 1200

Вектор ручной роспись мультфильм CAT

1200 * 1200

Planar черный силуэт векторные карты элементов кошки

1200 * 1200

изображение черного вектора кота или цветной иллюстрации

1200 * 1200

милый женский кот векторные иллюстрации

5000 * 5000

9000 * 5000

злой желтый кот вектор Illustartion на белом фоне

1200 * 1200

Набор силуэтов черной кошки

4167*4167

вектор Мультфильм животных Kitty Cat

1200 * 1200

Red Cat иллюстрации на белом фоне

1200 * 1200

Силуэт черно-белый тонкий кот вектор или цвет illustr

1200 * 1200

сатанинская кошка векторная иллюстрация

5000*5000

любители кошек для дизайна футболки 1667

кошка нужен пляж закат ретро векторные иллюстрации

5000 * 5000

лапы вектор ноги тропа печать кошек собака щенка животных на белом фоне

3000 * 3000

Хэллоуин кошка в тыкве

3000*3000

очаровательны животные животные искусство произведения искусства ребенок мультфильм кошка персонаж веселый ребенок милый да y дизайн каракули рисунок элемент лицо веселье графика приветствие счастливое сердце значок иллюстрация изолированный котенок котенок этикетка любовь домашнее животное розовый улыбка наклейка сладкий вектор белый

кошка носить наушники иллюстрации

5000 * 5000

Симпатичная записка дизайн с кошачкой головы вектор

2000 * 2000

рисованной Мультфильм Cat

3072 * 4107

4583 * 4583

Лапы Векторные ноги след печати кошачья собака щенка животных на белом фоне

3000 * 3000

кошачий танец и вытирание

5000 * 5000

мой кот Валентина дизайн футболки eps и p ng file

4000 * 4000

Pirates Cat векторные изображения с редактируемыми слоями

5000 * 5000

9000 * 5000

Простая рамка границы с милыми дизайном Cat

2000 * 2000

New

Cat Векторная линия Искусство с каракули стиль

4000 * 4000

домашних животных поставляет собака кошек домашних животных и собак поставляет

1201 * 1201

животных кошка мультфильм рисованной стиль

1200 * 1200

текстовое поле с милыми Кошка Иллюстрация

2000 * 2000

1200 * 1200

кошка мультипликационный персонаж мило

2000 * 2000

плоский кот POAW PNG Download

* 4167

красочная кошка надежда

4000 * 4000

кошки книги кофе типография дизайн футболки векторная иллюстрация Tradion

1200 * 1200

50007

5000 * 5000

Китайский Новый год Гун Xi Fa Cai Название с Lucky Cat Png Бесплатно

1200 * 1200

Белый кошачий сон

10364 * 10364

Счастливый День Святого Валентина Валентина Любовь Текст на основе типографии кошка футболка дизайн

1200 * 1200

жена Мать кошка Любовник футболка

2000 * 2000

Cat Fox Bear Утка Свинья в лучшем друге Citchly

1200 * 1200

10364 * 10364

Красивый черный белый Cat

1201 * 1201

Cat Silhouette PNG

1200 * 1200

силуэты бенгальских кошек

2000*2000

непрерывное рисование линий минималистичных животных кошек

4000*40 00

Любовь и кошка футболка Дизайн

1200 * 1200

St Patrick Day Cat Paw Shamrock

4500 * 4500

Cute Cat Набор коллекции

1200 * 1200

цветные забавные кошки PAW

2500 * 2500

домашних животных, шерстяные мяч пряжи мяч кошка собака

1201 * 1201

черный силуэт кота мультфильм кошка любовь стиль

1200 * 1200

Мультфильм Радуга Unicorn Cat

1200 * 1200

Cat Eye Мультфильм значок дизайн шаблона Вектор

2000 * 2000

Работает на Cats и кофе Цитата надписи

4167 * 4167

шаблон логотипа черного кота

2000*2000

кот милые друзья

1200*1200

9000 7

cat lover vector

1200*1200

зоотовары товары для кошек и собак миска с едой

1201*1201

кишечные и кишечные паразиты, трансмиссивные и кишечные патогены Греция

Abstract

В этом обзоре изучалось распространение различных кишечных паразитов и трансмиссивных патогенов у бездомных и бродячих кошек, живущих в четырех регионах Греции. В общей сложности сто пятьдесят кошек, живущих на трех островах (Крит, Миконос и Скопелос) и в муниципалитете Афин, были установлены как реалистичная цель, которую необходимо достичь в исследуемых районах. Все кошки были обследованы с помощью различных микроскопических, серологических и молекулярных анализов, направленных на оценку наличия кишечных паразитов, а также воздействия или наличия трансмиссивных инфекций. В общей сложности 135 кошек (90%) были положительными на одного или нескольких паразитов и/или патогенов, передающихся эктопаразитами.Сорок четыре (29,3%) кошки дали положительный результат на одну инфекцию, а 91 (60,7%) на более чем один возбудитель. Было обнаружено большое количество (n. 53) множественных инфекций, вызванных кошачьими кишечными и трансмиссивными агентами, включая как минимум один зоонозный патоген. Среди них наиболее часто регистрировались аскариды ( Toxocara cati , 24%) и Dipylidium caninum (2%), а у большого числа обследованных животных (58,8%) серореакция была на Bartonella spp. , затем Rickettsia spp. (43,2%) и Leishmania infantum (6,1%). Анализы на основе ДНК выявили зоонозные переносимые членистоногими организмы Bartonella henselae , Bartonella clarridgeiae , Rickettsia spp. и L . младенец . Эти результаты показывают, что кошки, живущие на свободном выгуле в исследуемых районах Греции, могут подвергаться воздействию множества внутренних паразитов и трансмиссивных патогенов, некоторые из которых потенциально способны заразить людей.Таким образом, эпидемиологическая бдительность и соответствующие меры контроля имеют решающее значение для профилактики и контроля этих инфекций и сведения к минимуму риска заражения людей.

Резюме автора

Несколько кишечных паразитов и трансмиссивных патогенов, некоторые из которых обладают зоонозным потенциалом, часто встречаются в популяциях кошек, живущих на свободном выгуле. Бездомных кошек много в туристических районах Греции, где они живут свободными колониями. С целью расширить наши знания об опасности, которую представляют кошки, живущие в туристических местах Греции, в настоящем исследовании оценивалось наличие кишечных паразитов и трансмиссивных патогенов у бездомных кошек, живущих в выбранных районах.Исследование показывает, что эти патогены присутствуют в Греции и что необходимо принять соответствующие меры контроля, чтобы свести к минимуму риск для кошек и людей.

Образец цитирования: Дьяку А., Ди Чезаре А., Акчеттура П.М., Баррос Л., Иорио Р., Паолетти Б. и др. (2017)Кишечные паразиты и трансмиссивные патогены у бездомных и бродячих кошек, живущих в континентальной и островной Греции. PLoS Negl Trop Dis 11(1): e0005335. https://doi.org/10.1371/журнал.pntd.0005335

Редактор: Кристиан Джонсон, Фонд Рауля Фоллеро, ФРАНЦИЯ

Получено: 23 ноября 2016 г.; Принято: 18 января 2017 г.; Опубликовано: 31 января 2017 г.

Авторское право: © 2017 Diakou et al. Это статья с открытым доступом, распространяемая в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution License, которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии указания автора и источника.

Доступность данных: Все соответствующие данные находятся в документе.

Финансирование: Проведение настоящего исследования было поддержано Merial S.A.S, 29 Av Tony Garnier, 69007, Лион, Франция. Merial Sas оплатит любую плату за публикацию. LH и FB являются работодателями Merial S.A.S, 29 Av Tony Garnier, 69007, Лион, Франция, и они участвовали в изучении дизайна и подготовке рукописи. Финансирующие организации не участвовали в сборе и анализе данных. Решение о публикации рукописи принято коллегиально для всех авторов.

Конкурирующие интересы: Соответствующий автор заявляет от имени AD, AdC, PMA, LB, RI, BP и AFdR, что нет никаких финансовых, личных или профессиональных интересов, которые могли бы быть истолкованы как влияющие на работу. LH и FB являются работодателями Merial S.A.S, 29 Av Tony Garnier, 69007, Лион, Франция.

Введение

У домашней кошки ( Felis silvestris catus ) могут быть кишечные паразиты и переносимые членистоногими патогены (например, бактерии, простейшие и гельминты), имеющие большое значение для ветеринарии и медицины человека.Некоторые из этих инфекций могут быть смертельными для кошек и представлять потенциальную угрозу для человека [1].

В последнее десятилетие появился новый интерес к зоонозным паразитам и трансмиссивным болезням (ВБЗ) домашних животных [2–4]. Тем не менее, знание различных аспектов этих инфекций у кошек-хозяев требует улучшения [3], особенно с точки зрения возникновения и распространения в различных географических районах.

В большинстве случаев зоонозы у кошек, находящихся в частной собственности, можно предотвратить и контролировать с помощью стандартной ветеринарной помощи, соответствующих средств для дегельминтизации и эффективных эктопаразитицидов [1,4], в то время как свободно гуляющие, бездомные или дикие кошки получают недостаточную ветеринарную помощь или не получают ее вообще. Таким образом, они могут представлять потенциальную угрозу здоровью домашних животных и людей. Это особенно важно, когда люди находятся в потенциально зараженной среде и/или вступают в контакт с зараженными свободно гуляющими кошками и переносчиками. При заражении свободноживущие кошки могут загрязнять окружающую среду паразитическими элементами и могут быть источником зоонозных патогенов для переносчиков, других животных и людей. В качестве ключевых примеров можно привести кошачью аскариду Toxocara cati , которая является недооцененным возбудителем заболеваний человека [2,4], кошачий блошиный бартонеллез и риккетсиоз, представляющие собой (повторно) возникающие угрозы для людей [5–7], а также потенциальную роль кошек. в качестве источника инфекции флеботоминовых москитов следует учитывать Leishmania infantum [8].

Бездомные кошки очень многочисленны и популярны в Греции, в том числе в туристических районах, где они часто живут в свободных колониях, управляемых на добровольной основе. Присутствие кишечных гельминтов и эктопаразитов, имеющих зоонозное значение, в популяциях кошек в Греции известно [9–11], но необходимо постоянное обновление знаний, особенно в отношении VBD. Фактически, патогены, переносимые эктопаразитами, в последнее время привлекли внимание, особенно в связи с потенциальным географическим распространением как в эндемичных, так и в ранее незараженных регионах.Это важно, учитывая, что ВБК кошек передаются человеку через укусы эктопаразитов (например, блох) и что некоторые из них (например, бартонеллез) могут передаваться напрямую от инфицированной кошки к человеку. Таким образом, эпидемиологическое внимание требуется в тех районах, где много бездомных или свободно бродящих животных, которые вступают в контакт с людьми или домашними животными.

В настоящем исследовании оценивалась встречаемость зоонозных паразитов и трансмиссивных патогенов у бездомных кошек, проживающих в отдельных районах Греции.

Методы

Районы исследования и отбор проб

Летом 2015 г. было проведено многоцентровое исследование в четырех областях Греции, т. е. на островах Крит (Область A), Миконос (Участок B) и Скопелос (Участок C), а также в городе Афины (Участок D) (рис. 1).

Рис. 1. Районы исследования.

Участки многоцентрового исследования, проведенного в Греции для изучения распространения зоонозных кишечных паразитов и трансмиссивных патогенов у кошек, живущих на Крите (Участок A), Миконосе (Участок B), Скопелосе (Участок C) и Афинах (Участок Д).

https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0005335.g001

Эти участки были выбраны на основе их туристической привлекательности, наличия колоний бездомных кошек и готовности местных ветеринаров и организаций по защите животных сотрудничать в исследовании. . Официальные разрешения на осмотр и отбор проб животных были получены от местных муниципальных властей. Образцы фекалий и крови были собраны у кошек, свободно бродящих или живущих в колониях из четырех вышеупомянутых мест.Фекалии собирали с помощью педиатрической клизмы, а кровь брали после седации, когда это было необходимо.

Для каждого животного регистрировали имеющиеся данные о поле, породе, условиях содержания, возрасте, клиническом статусе (наличие или отсутствие клинических признаков, совместимых с паразитозами).

Всего в Зоне A-D было собрано 34, 43, 25, 48 (т.е. всего 150 кошек) образцов фекалий соответственно. Образцы крови также были взяты у всех этих животных, за исключением двух кошек из Зоны B.

Исследование образцов фекалий

Для каждого образца фекалий применялась классическая техника флотации следующим образом. Около 5 граммов фекалий разбавляли ~20 мл флотационного раствора ZnSO ₄ (33,2% вес/объем), а затем смесь процеживали через сито с размером ячеек ~250 мкм. Раствор разделяли на две центрифужные пробирки Falcon объемом 15 мл и центрифугировали при 2000 об/мин в течение 5 мин. С помощью пипетки Пастера аликвоту супернатанта переносили из первой пробирки на предметное стекло, которое исследовали под световым микроскопом при увеличении в 200 и 400 раз. Паразитические элементы идентифицировали по морфологическим и морфометрическим признакам: морфологии яйца, поверхности стенки, мерам [12]. Аликвоту ~500 мкл переносили из второй пробирки Falcon в пробирку Eppendorf и хранили при -20°C до дальнейшего анализа. Все сегменты цестод, обнаруженные при макроскопической обработке фекалий, были промыты физиологическим раствором и сохранены в 70% этаноле для дальнейшего анализа.

Образцы фекалий были также подвергнуты копромикроскопическому анализу по методу Бермана для исследования возникновения легочных метастронгилоидов.Методологии и результаты были ранее опубликованы [13] и далее здесь не обсуждались.

Анализ крови

Микроскопия.

Мазки крови, окрашенные по Гимзе, также выполняли следующим образом. Каплю ЭДТА-крови наносили на предметное стекло и размазывали. После сушки на воздухе предметные стекла покрывали абсолютным метанолом на 5 минут, а затем сушили на воздухе. Предметные стекла покрывали Гимза (1:20 в забуференной воде) и окрашивали в течение 30 минут, быстро промывали дистиллированной водой, сушили при комнатной температуре и затем анализировали под микроскопом (увеличение 1000Х).

Серология.

Сыворотки, полученные из образцов крови, центрифугированных при 3000 об/мин в течение 10 мин, подвергали следующим серологическим исследованиям:

Набор для определения антител к сердечному червю кошек « SoloStep FH Cassette » (HESKA) использовали для качественного определения антител, специфичных к Dirofilaria immitis , в соответствии с инструкциями производителя.

Антитела
Anti- Bartonella henselae -IgG определяли с помощью набора для непрямого иммунофлуоресцентного анализа антител (IFAT) «Mega FLUO BARTONELLA henselae» (Megacor Diagnostik GmbH) (отсечка 1:64) в соответствии с инструкциями производителя.
Наличие антител против Rickettsia typhi и Rickettsia felis оценивали с помощью IFAT с использованием коммерческого антигена (препараты, покрытые очищенными индивидуальными субстратными антигенами R . typhi и R . felis— felis— ) и анти-кошачий IgG (конъюгат FLUO FITC против кошачьего IgG). Согласно литературным данным, в качестве порога использовали скрининговое разведение 1:64 [14].
Антитела против Ehrlichia canis исследовали методом IFAT с использованием коммерческого антигена (т.е. предметные стекла, покрытые E . canis антигены — MegaScreen FLUO Ehrlichia canis ) и анти-кошачий IgG (конъюгат FLUO FITC против кошачьего IgG — Fuller Laboratories). В качестве отсечки использовали скрининговое разведение 1:40 [15].
Тест IFAT был проведен для оценки наличия антител против L . infantum с использованием коммерческих предметных стекол, покрытых промастиготами (MegaFLUO Leish—Megacor Diagnostik GmbH) и анти-кошачьим IgG (конъюгат FLUO FITC против кошачьего IgG).В качестве порогового значения было выбрано скрининговое разведение 1:80 [16].

Для всех определений IFAT кошачьи сыворотки разводили в PBS в соответствии с порогом отсечения и инкубировали на отдельных лунках предметных стекол в течение 30 минут при 37°C во влажной камере, чтобы обеспечить образование антиген-антитело. Затем предметные стекла промывали с помощью PBS для удаления нереактивных белков сыворотки и добавляли флуоресцентный конъюгат для маркировки комплекса антиген-антитело. После инкубации при 37°C в течение 30 минут во влажной камере предметные стекла снова промывали для удаления нереакционноспособного конъюгата, а полученные реакции визуализировали с помощью стандартной флуоресцентной микроскопии при 400-кратном увеличении.Хотя некоторые из вышеупомянутых процедур использовались не по прямому назначению , все они ранее уже применялись для серологической диагностики инфекций кошек [14–16].

Молекулярное исследование.

Все образцы крови были подвергнуты различным молекулярным исследованиям, чтобы идентифицировать, если они присутствуют, патоген(ы) на видовом уровне.

Геномную ДНК экстрагировали с использованием коммерческого набора (QIAamp DNA blood Mini kit — Qiagen GmbH, Hilden, Germany) из всех образцов крови в соответствии с инструкциями производителя.

Положительный результат на Bartonella spp. [17], Anaplasmataceae [17], Rickettsia spp. [17,18] и Leishmania spp. [17,18] ДНК тестировали с помощью различных протоколов ПЦР, доступных в литературе.

продукта ПЦР визуализировали в УФ-освещении после миграции электрофореза на 1,8% агарозном геле, окрашивали GelRed (Promega), а затем индивидуально секвенировали непосредственно в автоматическом секвенаторе. Последовательности определяли в обоих направлениях, выравнивали с помощью программного обеспечения ClustalX и сравнивали с доступными в GenBank с помощью инструмента поиска базового локального выравнивания нуклеотидов (BLASTN) [19].

Результаты

Фекалии

Всего было подвергнуто микроскопическому исследованию 150 образцов стула, т.е. 34, 43, 25, 48 в Зонах A-D соответственно.

Копромикроскопия (табл. 1).

Наиболее распространенным кишечным зоонозным гельминтом, обнаруженным при исследовании фекалий, был T . cati (24%), за которым следует Dipylidium caninum (2%). Другими обнаруженными обычными паразитами были нематоды (например, Toxascaris leonina — 8%), простейшие (т.е. Cystoisospora rivolta – 7,3%).

Кровь

Всего было подвергнуто микроскопическому и серологическому анализу 148 образцов крови, т.е. 34, 41, 25, 48 в Зонах A-D соответственно.

Мазки крови.

Микроскопическое исследование мазков крови, окрашенных по Гимзе, показало присутствие Bartonella spp./ Rickettsia spp. в четырех образцах соответственно.

Серологические анализы (таблица 2).

Из этих четырех вышеупомянутых кошек (раздел Мазки крови) три были положительными при серологическом исследовании на Rickettsia spp.и один был положительным на Bartonella spp.

В целом, самый высокий процент серопозитивных результатов был для B . henselae (58,8%), за которыми следуют Rickettsia spp. (43,2%), л . infantum (6,1%), D . immitis (4,7%) и E . canis (2%). Серореактивность в отношении R . тифи и R . felis составляли 41,9% и 6,1% соответственно.

Генетические исследования (табл. 3).

Все кошки, отрицательные по серологическим анализам, также были отрицательными по результатам специфической ПЦР (т.е. при серологических тестах не было получено ложноотрицательных результатов) на Rickettsia spp., Bartonella spp., Leishmania spp. и анаплазматовые. Все образцы, получившие молекулярно-положительный результат, также были положительными либо при микроскопии, либо при серологических тестах, либо при обоих, как подробно описано ниже.

Rickettsia spp.: Ампликоны прогнозируемого размера Rickettsia spp. было произведено 50 проб крови. Из этих образцов 44 были серологически положительными на R . тифи , 2 для R . Felis и 4 к R . брюшной тиф + R . кошачий . Пятнадцать (15) из этих ампликонов подвергали секвенированию на основе подходящей концентрации амплифицированной ДНК на агарозном геле, т.е. 10 серологически положительных на R . тифи , 1 для R . Felis и 4 для R . брюшной тиф + R . кошачий . Серопозитивность 10 кошек к R . тифи и кота R . felis был подтвержден в ПЦР с 99% идентичностью с R . typhi Регистрационный номер GenBank U59714.1 и R . felis Номер доступа GenBank KT153040.1 соответственно. Амплифицированная ДНК от 2 кошек, серореагировавших на R . брюшной тиф + R . felis показал 99% идентичность с R . typhi GenBank Регистрационный номер U59714.1.

Секвенирование двух других ампликонов, полученных из крови, положительной по R . брюшной тиф + R . Felis не удалось.

Bartonella spp.: кровь семи кошек, серологически положительная на B . henselae , также был ПЦР-положительным для Bartonella spp.; секвенирование подтвердило положительный результат на B . henselae у шести кошек (100% идентичность с номером доступа GenBank: KT318618.1) и с Bartonella clarridgeiae у одной кошки (100% идентичность с номером доступа GenBank: AB896698.1).

Leishmania infantum : девять кошек серопозитивны на L . infantum также оказался положительным при ПЦР с 99–100% идентичностью с L . infantum GenBank Регистрационные номера AB896685.1 и HM807524.1.

Anaplasmataceae: кровь трех кошек, серореагировавших на E . canis был ПЦР-отрицательным.

Коинфекции и географическое распространение.

Сто тридцать пять кошек (90%) дали положительный результат на одного или нескольких паразитов и/или переносимых членистоногими патогенов по крайней мере в одном диагностическом тесте (таблицы 1 и 4). Из исследуемых животных у 44 (29,3%) были обнаружены моноспецифические инфекции, а у 91 (60,7%) были обнаружены более чем один возбудитель.

Зона B показала самую высокую распространенность инфекции зоонозными кишечными паразитами (т.е. T . cati – 32,6% и D . caninum –7%) (табл. трансмиссивные патогены, представляющие опасность для человека (например, B . henselae — 64,7 %, Rickettsia spp. 53 %, L . infantum — 14,7 % (таблица 2). самая высокая распространенность кошек, положительных на смешанные инфекции, включая по крайней мере один зоонозный возбудитель (т.е. 16% р . тиф + В . henselae , за которыми следуют 17 других различных коинфекций с 4% положительных результатов). У всех 25 кошек (100%), обследованных в зоне C, была выявлена моно- или полиспецифическая инфекция, по крайней мере, одним зоонозным паразитом. Участком с наибольшим количеством различных комбинаций смешанных инфекций, включающих как минимум один зоонозный патоген, был участок D (n = 21 против 10, 19 и 18 участков A, B и C соответственно).

Обсуждение

Эти результаты показывают, что свободно гуляющие и бродячие кошки, живущие в исследованных районах Греции, могут подвергаться воздействию нескольких паразитов и агентов, передающихся эктопаразитами.Эти результаты, вероятно, связаны с низким уровнем обработки дегельминтизаторами и эктопаразитицидами кошек, живущих в свободных колониях на изучаемых территориях. Выявленные здесь различные инфекции имеют ветеринарное и человеческое значение, а переносчики некоторых из них, напр. блохи, клещи и москиты, могут питаться людьми.

Частое возникновение коинфекций кишечными гельминтами может быть результатом сильного загрязнения окружающей среды, что позволяет предположить, что животные (и люди в случае зоонозных паразитов), проживающие в одной среде обитания, подвергаются высокому риску заражения.Геогельминты кошек (т.е. паразиты, передающиеся в основном через загрязненную почву), в частности T . cati , оказывают важное влияние на здоровье как животных, так и людей. Способность инфицированных кошек способствовать загрязнению земли и почвы своими фекалиями актуальна, поскольку инвазионные яйца аскарид в течение многих лет устойчивы во внешней среде [4, 20]. Очень маловероятно, что яиц Toxocara , обнаруженные в фекалиях исследованных здесь кошек, произошли от проглатывания фекалиями собак исследованными кошками.Следовательно, вполне вероятно, что все образцы, положительные на аскариды, были получены от кошек, действительно зараженных T . Кати . Соответственно высокий уровень зараженности T . cati (24%), обнаруженные в настоящем обзоре, следует принимать во внимание, так как они являются потенциальным источником заражения человека. После Т . cati яиц выделяются через фекалии животных, они созревают в течение нескольких недель и при случайном проглатывании людьми (особенно детьми) мигрирующие личинки могут вызывать larva migrans синдромы, e.г. «висцеральная larva migrans » (VLM) и «глазная larva migrans » (OLM) [20, 21]. Собачья аскарида Toxocara canis в значительной степени считается основным возбудителем этих личиночных синдромов, в то время как зоонозная роль T . cati недооценен [2]. Однако есть указание, что T . cati ассоциируется как с ВЛМ, так и с ОЛМ чаще, чем обычно считается, особенно при поражении печени и необратимых поражениях глаз [22–25].

Это исследование также продемонстрировало, что свободно гуляющие кошки из исследуемых регионов могут также заразиться дирофиляриозом, переносимым комарами, и дипилидиозом, передающимся от блох, и подвергаться воздействию различных микроорганизмов, переносимых членистоногими, т.е. Bartonella spp., Leishmania spp. и Rickettsia spp..

В отношении переносимых членистоногими гельминтов, зоонозных D . иммитис и D . caninum были зарегистрированы у разных кошек (табл. 1 и 2).Подкожный Dirofilaria repens чаще вызывает болезни человека в Старом Свете, но D . Известны также инфекции, вызываемые immitis , в том числе в Греции [26]. Позитивность к D . immitis у некоторых кошек (таблица 2) показывает, что инфекционное давление для этого паразита может быть высоким при определенных обстоятельствах, что представляет риск для человека. Однако серопозитивность трех кошек с Крита не ожидалась, так как этот район считается неэндемичным по D . иммитис [27]. С другой стороны, следует учитывать, что серопозитивный результат у кошки не обязательно свидетельствует о сопутствующей инфекции взрослыми червями, но также может указывать на абортированную инфекцию или просто на воздействие инвазионных стадий [28]. Следовательно, эти результаты могут просто означать повышенный риск воздействия D . immitis в неэнзоотических районах.

Инфекции человека по D . caninum возникают у молодых людей, хотя и редко [29, 30], после непреднамеренного заглатывания инфицированных блох или их остатков. Следовательно, устранение как этого ленточного червя, так и его переносчиков у кошек имеет важное значение для предотвращения инфекций человека и животных. Следует учитывать, что процент заражения по D . Зарегистрированный здесь caninum , вероятно, недооценен из-за низкой чувствительности исследования кала при обнаружении ленточного червя у инфицированных животных [31].

Наиболее важным ВБК кошек с точки зрения эпидемиологического и ветеринарного здоровья и здоровья человека является бартонеллез, вызываемый B . хенсела . Это заболевание называется лихорадкой кошачьей царапины или болезнью кошачьей царапины (БКЦ), которая передается между животными и от животных к человеку путем инокуляции открытой раны (например, царапины или укуса) зараженными фекалиями блох. Инфекция у людей проявляется различными клиническими признаками (лихорадкой, головной болью, регионарной лимфаденопатией и др.), атипичными симптомами и потенциально смертельными осложнениями у лиц с ослабленным иммунитетом [32, 33]. У кошек часто развиваются субклинические инфекции с B . henselae и часто остаются невыявленными и бессимптомными резервуарами [34]. По вышеупомянутым причинам бродячие, бродячие или дикие кошки играют решающую роль в качестве источника заражения человека вирусом B . хенсела . Таким образом, следует отметить, что более половины обследованных кошек (58,8%), происходящих из всех мест исследования, были Bartonella -положительными при серологических тестах (таблица 2). Эта серопозитивность предполагает контакт с патогеном и не обязательно указывает на то, что эти животные были бактериемичны и заразны для блох.Тем не менее, молекулярное обнаружение B . henselae в крови некоторых серопозитивных кошек усиливает их роль резервуара бартонеллеза. Кроме того, одна кошка была генетически положительной к B . clarridgeiae , который, как предполагается, является еще одним переносимым блохами возбудителем БКК [34–36]. Таким образом, здесь показан значительный риск для человека для этих Bartonella -положительных кошек как носителей эктопаразитов и возможных резервуаров-источников БКК [37].

Блохи также являются переносчиками некоторых риккетсиозов кошек и человека. Rickettsia felis является возбудителем переносимой блохами пятнистой лихорадки, также известной как сыпной тиф кошачьих блох. Этот новый патоген передается кошачьей блохой Ctenocephalides felis , хотя подозревается также, что комары переносят эту бактерию [38]. Кошки и другие животные (например, собаки) могут быть положительными на R . felis , хотя инфекции животных в основном носят субклинический характер, и роль млекопитающих как резервуара нуждается в дополнительных подтверждающих доказательствах [39].В любом случае инфекции человека широко известны и характеризуются неспецифической симптоматикой, неврологическими, пищеварительными и респираторными нарушениями [40]. Мышиный тиф вызывается R . typhi , передача которых обеспечивается классическим циклом крыса-блоха-крыса и околодомашним циклом с участием кошек, собак, других животных и их блох. Кошки и некоторые дикие животные считаются резервуарами инфекции и C . felis — основной переносчик этого патогена [41].Хотя предполагается связь между серопозитивными кошками и случаями мышиного сыпного тифа у людей [42, 43], до недавнего времени, когда бессимптомное животное было молекулярно диагностировано с R , не было обнаружено ни одной естественно инфицированной кошки. typhi в Испании [44]. Человеческий мышиный сыпной тиф обычно представляет собой легкое лихорадочное заболевание, хотя описаны тяжелые и опасные для жизни последствия [41, 45]. Высокие уровни серореакции на Rickettsia spp. (Таблица 2), наряду с молекулярным подтверждением R . тифи и R . ДНК felis при ПЦР (таблица 3) показывают, что бездомные кошки в исследуемых районах подвергаются воздействию переносимых блохами организмов и являются потенциальными переносчиками этих инфекций. Важно отметить, что различные кошки были серопозитивными в отношении Rickettsia spp. и Bartonella spp. в то же время, еще больше подтверждая высокий риск множественных зоонозных инфекций, переносимых блохами.

Ehrlichia canis , то есть возбудитель моноцитарного эрлихиоза собак, является важным патогеном собак во всем мире [15].Наоборот, его значение для кошек-хозяев менее четко определено, хотя серологические и молекулярные доказательства E . Существуют canis -подобные инфекции [46, 47]. Клещевой эрлихиоз человека обычно вызывается Ehrlichia chaffeensis , который вызывает гриппоподобный синдром, в то время как роль E . canis при инфекциях человека еще предстоит окончательно выяснить [48–50]. Хотя только одна кошка была здесь серореактивна к E . canis (таблицы 2 и 3), несмотря на отрицательный результат ПЦР, следует дополнительно изучить риск воздействия переносимых клещами патогенов для бездомных кошек в районах исследования.

Собаки, зараженные L . infantum являются основным источником инфекции для переносчиков москитов, которые также могут кусать людей и других животных, например. кошки. Лейшманиоз человека в Средиземноморском бассейне может развиваться при висцеральных, кожных и слизисто-кожных заболеваниях, особенно тяжелых у молодых людей, страдающих от недоедания и с ослабленным иммунитетом [51]. Кошки иногда являются хозяевами L . infantum и, вероятно, их роль в эпизоотологии лейшманиозов незначительна [3].Положительный результат на Leishmania spp. у кошачьих встречается редко, хотя уже описан в Средиземноморской Европе, включая Грецию [13, 52, 53].

Настоящее обнаружение кошек, серологически и молекулярно положительных на L . infantum показывает, что паразитологическое давление с этим простейшим в исследуемых районах может представлять потенциальную опасность для животных и людей. На самом деле L . infantum -положительные кошки могут быть инфицированы Phlebotomus perniciosus , т.е.е. один из важнейших переносчиков лейшманиоза [8]. Хотя наличие P . perniciosus не подтвержден в Греции, нельзя исключить серопозитивных кошек, которые также являются ПЦР-положительными для L . infantum (как и в настоящем исследовании) может быть способен передавать организм кровососущим переносчикам. В настоящем исследовании Leishmania -позитивных кошек были из участков A (14,7%) и D (8,3%), где присутствуют москиты и паразит хорошо известен [54–55].Важно отметить, что участки A и D находятся в районах, эндемичных по висцеральному лейшманиозу [55], поэтому следует поощрять дальнейшие исследования, направленные на понимание роли кошек в эпизоотологии паразита.

В целом информация о риске заражения зоонозами и распространенности патогенов среди различных популяций кошек все еще недостаточна в обширных географических районах, особенно в отношении ВБД [3]. Таким образом, настоящая работа добавляет новую информацию о появлении зоонозных паразитов и переносимых членистоногими патогенов у кошек, живущих в районах Греции.Самостоятельный образ жизни кошек, особенно в свободно гуляющих колониях, может привести к высокому загрязнению окружающей среды паразитарными элементами, т.е. яйца круглых червей [4], а также в повышенном риске контакта человека с кошачьими эктопаразитами или прямой передачи болезней, например. бартонеллез [31]. Большинство зарегистрированных здесь VBD часто клинически не проявляются и не обнаруживаются у кошек, однако они могут вызывать заболеваемость и даже смертность у людей. Наличие антител против важных VBD и/или ДНК циркулирующих микроорганизмов свидетельствует о том, что кошки часто подвергаются воздействию членистоногих переносчиков и передающихся заболеваний в изучаемых географических регионах.

Учитывая, что кошки, инфицированные зоонозными паразитами и/или VBD, могут казаться здоровыми, вполне вероятно, что подверженность этим заболеваниям на уровне популяции часто упускается из виду без целенаправленного и постоянного наблюдения.

В туристических зонах требуется рутинный эпиднадзор, поскольку перемещения домашних животных представляют значительный риск распространения патогенов, поскольку i) они могут быть завезены из энзоотических регионов в свободные, когда инфицированные животные путешествуют со своими владельцами, ii) домашние животные, путешествующие в энзоотические районы, могут заразиться патогены из посещенных мест или от местных животных и занести их в свободные зоны, когда они возвращаются домой.Важно отметить, что многие зоонозные патогены (например, Bartonella spp., Rickettsia spp.), инфицирующие кошек и различных эктопаразитов (например, клещи и блохи), также способны инфицировать/заражать собак. Это важно, если учесть, что собаки часто путешествуют со своими семьями во время отпуска. Таким образом, меры контроля имеют основополагающее значение для предотвращения и борьбы с зоонозными инфекциями и внешними паразитами как у собак, так и у кошек, посредством плановых обработок и профилактических мер с использованием эффективных препаратов против паразитов широкого спектра действия. В то же время крайне важно информировать общественность, ветеринарных врачей и должностных лиц органов здравоохранения о фактических рисках заболеваний, потенциально связанных с свободно гуляющими кошками, чтобы способствовать безопасному перемещению людей и домашних животных и не допускать необоснованных действий. препятствовать прямым контактам с местными кошками.

Благодарности

Авторы хотели бы поблагодарить следующих коллег: Афину Цокана, Димитриса Папаиоанну, Христоса Ктенаса, Ники Лемони, Таню Аэриниотаки за ценное участие.Авторы также благодарны Carmine Merola, Simone Morelli и Francesca Laiacona за их поддержку в работе лаборатории.

Вклад авторов

Концептуализация: DT LH.
Контроль данных: DT AD АЦП.
Формальный анализ: ADC AD DT.
Финансирование приобретения: DT.
Расследование: АД АДЦ ПМА ЛБ РИ БП.
Методология: DT АЦП.
Администрация проекта: DT ADC.
Ресурсы: ДТ АД АДЦ РИ.
Надзор: ДТ АД.
Валидация: DT.
Визуализация: AD ADC AFdR LH FB DT.
Письмо – первоначальный вариант: AD ADC AFdR LH FB DT.
Написание – просмотр и редактирование: AD ADC AFdR LH FB DT.

Каталожные номера

1. Джерхольд РВ, Джессап Д.А.Зоонозные заболевания, связанные с бродячими кошками. Зоонозы Общественное здравоохранение. 2013; 60 (3): 189–195. пмид:22830565
2. Fisher M. Toxocara cati : недооцененный зоонозный агент. Тенденции Паразитол. 2003 г.; 19(4):167–170. пмид:12689646
3. Отранто Д., Дантас-Торрес Ф. Трансмиссивные болезни собак и кошек в Италии: текущая ситуация и перспективы. Векторы паразитов. 2010 г.; 3:2. пмид:20145730
4. Траверса Д. Аскариды домашних животных и анкилостомы: постоянная потребность в глобальной борьбе с гельминтами.Векторы паразитов. 2012 г.; 5: 91. pmid:22574783
5. Брайтшвердт ЭБ. Бартонеллез кошек и болезнь кошачьих царапин. Вет Иммунол Иммунопатол. 2008 г.; 123 (1–2): 167–171. пмид:18295347
6. Beugnet F, Мари JL. Новые болезни животных-компаньонов в Европе, переносимые членистоногими. Вет Паразитол. 2009 г.; 163(4): 298–305. пмид:19403239
7. Штютцер Б., Хартманн К. Хронический бартонеллез у кошек: каковы возможные последствия? J Feline Med Surg.2012 г.; 14(9): 612–621. пмид:22
4
8. Мароли М., Пенниси М.Г., Ди Муччио Т., Хури С., Градони Л., Грамичча М. Заражение москитов кошкой, естественно инфицированной Leishmania infantum . Вет Паразитол. 2007 г.; 145: 357–360. пмид:17174035
9. Кутинас А. Ф., Папазахариаду М.Г., Раллис Т.С., Цивара Н.Х., Химонас К.А. Виды блох у собак и кошек в северной Греции: экологические и клинические последствия. Вет Паразитол. 1995 год; 58 (1–2): 109–115.пмид:7676591
10. Лефкадитис М.А., Сосиду А.В., Панориас А.Х., Кукери С.Е., Паштиу А.И., Афанасиу Л.В. Городские бездомные кошки, зараженные эктопаразитами с зоонозным потенциалом в Греции. Паразитол рез. 2015 г.; 114 (10): 3931–3934. пмид:26319525
11. Сотираки С. Мультипаразитарные инвазии кошек в Греции. Материалы 12-го симпозиума Merial по паразитозам и болезням, передаваемым членистоногими. 21-24 марта 2016 г., Le Meridien RA, EL Vendrell, Испания. стр. 86–90.
12.Тейлор М.А., Кооп Р.Л., Стена Р.Л. Ветеринарная паразитология. 3 ^rd edn, Blackwell Publishing Ltd., Оксфорд, Великобритания. 2007
13. Дьяку А., Пападопулос Э., Лазаридес К. Специфические анти- Leishmania spp. антител у бездомных кошек в Греции. J Feline Med Surg. 2009 г.; 11(8):728–730. пмид:19254858
14. Сегура Ф., Понс И., Мирет Х., Пла Х., Ортуньо А., Ногуерас М.М. Роль кошек в экоэпидемиологии заболеваний группы пятнистой лихорадки. Векторы паразитов.2014; 7: 353. pmid:25084969
15. Эбани В.В., Бертеллони Ф. Серологические данные о воздействии Ehrlichia canis и Anaplasma phagocytophilum на здоровых домашних кошек Центральной Италии. Клещи Tick Borne Dis. 2014; 5: 668–671. пмид:25113987
16. Пенниси М.Г., Кардосо Л., Банет Г., Бурдо П., Кутинас А., Миро Г. и др. Новости и рекомендации LeishVet по кошачьему лейшманиозу. Векторы паразитов. 2015 г.; 8: 302. pmid:26041555
17.Майя С., Рамос С., Коимбра М., Бастос Ф., Мартинс А., Пинто П. и др. Бактериальные и протозойные возбудители кошачьих трансмиссивных болезней у домашних и бездомных кошек из южной Португалии. Векторы паразитов. 2014; 7: 115. pmid:24655431
18. Maia C, Ferreira A, Nunes M, Vieira ML, Campino L, Cardoso L. Молекулярное обнаружение бактериальных и паразитарных патогенов у твердых клещей из Португалии. Клещи Tick Borne Dis. 2014; 5(4): 409–414 пмид:24745731
19. Альтшул С.Ф., Мэдден Т.Л., Шеффер А.А., Чжан Дж., Чжан З., Миллер В. и др.Gapped BLAST и PSI-BLAST: новое поколение программ поиска белковых баз данных. Нуклеиновые Кислоты Res. 1997 год; 25 (17): 3389–3402. пмид:9254694
20. Despommier D. Токсокароз: клинические аспекты, эпидемиология, медицинская экология и молекулярные аспекты. Clin Microbiol Rev. 2003; 16: 265–272. пмид:12692098
21. Голландия CV, Смит HV. Toxocara : загадочный паразит. Оксфордшир, Великобритания, CABI Publishing. 2006.
22. Симокава Х., Накашима Т., Акаги К., Омаэ Т., Цудзи М.Мигрирующая висцеральная личинка Toxocara cati. Фукуока Игаку Засси. 1982 год; 73: 64–69. пмид:7076106
23. Petithory JC, Chaumeil C, Liotet S, Rosseau M, Bisognani C. In Lewis JW, Maizels RM eds, Иммунологические исследования глазных мигрирующих личинок. Toxocara и токсокароз; клинические, эпидемиологические и молекулярные перспективы. Лондон, Великобритания. Британское общество паразитологии при Институте биологии. 1993. стр. 81–89.
24. Сакаи Р., Кавасима Х., Сибуи Х., Камата К., Камбара С., Мацука Х. Toxocara cati — индуцированный глазной токсокароз. Arch Ophthalmol 1998; 116: 1686–1687. пмид:9869809
25. Ли А., Шанц П.М., Казакос К.Р., Монтгомери С.П., Боуман Д.Д. Эпидемиологические и зоонозные аспекты аскаридозов у собак и кошек. Тенденции Паразитол. 2010 г.; 26: 155–161. пмид:20172762
26. Фалидас Э., Гургиотис С., Ивопулу О., Кутсояннис И., Ойконому С., Влахос К. и др. Подкожный дирофиляриоз человека, вызванный Dirofilaria immitis , у взрослого грека.J заразить общественное здравоохранение. 2016; 9(1): 102–104. пмид:26166816
27. Diakou A, Kapantaidakis E, Tamvakis A, Giannakis V, Strus N. Инфекции Dirofilaria у собак в разных районах Греции. Векторы паразитов. 2016; 9(1): 508. pmid:27646111
28. Браун Л.Э., Картер Т.Д., Леви Дж.К. Заболевание легочных артерий у кошек, серопозитивных к Dirofilaria immitis , но без взрослых сердечных червей в сердце или легких. Am J Vet Res. 2005 г.; 66: 1544–1549.пмид:16261827
29. Тейлор Т., Зицманн М.Б. Dipylidium caninum у 4-месячного самца. Clin Lab Sci. 2011 г.; 24(4): 212–214. пмид:22288218
30. Нарасимхам М.В., Панда П., Моханти И., Саху С., Падхи С., Даш М. Инфекция Dipylidium caninum у ребенка: отчет о редком случае. Индийская J Med Microbiol. 2013; 31(1): 82–84. пмид:23508438
31. Дантас-Торрес Ф., Отранто Д. Собаки, кошки, паразиты и люди в Бразилии: открытие черного ящика.Векторы паразитов. 2014; 7: 22. pmid:24423244
32. Хомель Б.Б., Булуи Х.Дж., Брайтшвердт Э.Б. Болезнь кошачьих царапин и другие зоонозные инфекции Bartonella . J Am Vet Med Assoc. 2004 г.; 224(8): 1270–1279. пмид:15112775
33. Мозепеле М., Мазо Д., Кон Дж. Инфекция Bartonella у хозяев с ослабленным иммунитетом: иммунология сосудистой инфекции и вазопролиферации. Клин Дев Иммунол. 2012 г.; 2012: 612809. pmid:22162717
34. Хомель Б.Б., Булуи Х.Дж., Маруяма С., Брайтшвердт Э.Б. Bartonella spp. у домашних животных и влияние на здоровье человека. Эмердж Инфекция Дис. 2006 г.; 12(3): 389–394. пмид:16704774
35. Ролен Дж. М., Франк М., Даву Б., Рауль Д. Молекулярное обнаружение Bartonella quintana , B . koehlerae , B . хенсела , Б . clarridgeiae , Rickettsia felis и Wolbachia pipientis у кошачьих блох, Франция. Эмердж Инфекция Дис. 2003 г.; 9: 338–342 пмид:12643829
36.Just FT, Gilles J, Pradel I, Pfalzer S, Lengauer H, Hellmann K, et al. Молекулярные доказательства наличия Bartonella spp. у кошачьих и собачьих блох из Германии и Франции. Зоонозы Общественное здравоохранение. 2008 г.; 55: 514–520. пмид:18489542
37. Хомель ББ, Кастен РВ. Бартонеллез, все более известный зооноз. J Appl Microbiol. 2010 г.; 109: 743–570. пмид:20148999
38. Ангелакис Э., Медианников О., Парола П., Рауль Д. Rickettsia felis : сложное путешествие нового патогена человека.Тенденции Паразитол. 2016; 32(7): 554–564. пмид:27155905
39. Джудиче Э., Ди Пьетро С., Алаймо А., Бланда В., Лелли Р., Франкавилья Ф. и др. Молекулярное исследование Rickettsia felis у блох кошек и собак на Сицилии (Южная Италия). ПЛОС Один. 2014;9(9): e106820. пмид:25203839
40. Parola P. Rickettsia felis : от редкого заболевания в США до частой причины лихорадки в странах Африки к югу от Сахары. Клин Микробиол Инфект. 2011 г.; 17: 996–1000.пмид:21722253
41. Civen R, Ngo V. Мышиный тиф: непризнанная пригородная трансмиссивная болезнь. Клин Инфекция Дис. 2008 г.; 46(6): 913–918. пмид:18260783
42. Сорвилло Ф.Дж., Гондо Б., Эммонс Р., Райан П., Уотерман С.Х., Тилзер А. и др. Пригородный очаг эндемического сыпного тифа в округе Лос-Анджелес: связь с серопозитивными домашними кошками и опоссумами. Am J Trop Med Hyg. 1993 год; 48(2): 269–273 пмид:8447530
43. Adjemian J, Parks S, McElroy K, Campbell J, Eremeeva ME, Nicholson WL, et al.Мышиный тиф в Остине, Техас, США, 2008 г. Emerg Infect Dis. 2010;16(3): 412–417. пмид:20202415
44. Ногерас М.М., Понс И., Ортуньо А., Мирет Дж., Пла Дж., Кастелла Дж. и др. Молекулярное обнаружение Rickettsia typhi у кошек и блох. ПЛОС Один. 2013; 8(8): e71386. пмид:23940746
45. Карр С.Б., Бергамо Д.Ф., Эммануэль П.Дж., Феррейра Д.А. Мышиный тиф как причина когнитивных нарушений: клинический случай и обзор литературы. Педиатр Нейрол. 2014; 50 (3): 265–268.пмид:24321542
46. Breitschwerdt EB, Abrams-Ogg AC, Lappin MR, Bienzle D, Hancock SI, Cowan SM, et al. Молекулярные доказательства, подтверждающие Ehrlichia canis -подобную инфекцию у кошек. J Vet Intern Med. 2002 г.; 16(6): 642–649. пмид:12465759
47. Ортуньо А., Гаусс К.Б., Гарсия Ф., Гутьеррес Х.Ф. Серологические данные Ehrlichia spp. экспозиции у кошек с северо-востока Испании. J Vet Med B Infect Dis Vet Public Health. 2005 г.; 52(5):246–248. пмид:16115100
48.Perez M, Rikihisa Y, Wen B. Ehrlichia canis -подобный агент, выделенный от мужчины в Венесуэле: антигенная и генетическая характеристика. Дж. Клин Микробиол. 1996 год; 34(9): 2133–2139. пмид:8862572
49. День МЮ. Одно здоровье: важность трансмиссивных болезней домашних животных. Векторы паразитов. 2011 г.; 4:49. пмид:21489237
50. Беатрис Сильва А., Пина Кансеко С., Габриэль де ла Торре Мдель П., Майораль Сильва А., Майораль М.А., Перес-Кампос Майораль Л. и др.Бессимптомное заражение человека от контакта с собаками: случай эрлихиоза человека. Гак Мед Мекс. 2014; 150(2): 171–174. пмид:24603998
51. Алвар Дж., Яктайо С., Берн К. Лейшманиоз и бедность. Тенденции паразитологии. 2006 г.; 22: 552–557. пмид:17023215
52. Шерри К., Миро Г., Тротта М., Миранда С., Монтойя А., Эспиноса С. и др. Серологическое и молекулярное исследование инфекции Leishmania infantum у кошек с острова Ибица (Испания). Векторные зоонозные заболевания.2011 г.; 11(3): 239–245. пмид:20804432
53. Чатзис М.К., Андреаду М., Леонтидес Л., Касабалис Д., Милонакис М., Кутинас А.Ф., Раллис Т., Икономопулос Дж., Саридомичелакис М.Н. Цитологическое и молекулярное обнаружение Leishmania infantum в различных тканях клинически нормальных и больных кошек. Вет Паразитол. 2014; 202 (3–4): 217–225. пмид:24629427
54. Христодулу В., Антониу М., Нтаис П., Мессаритакис И., Ивович В., Дедет Дж. П., Пратлонг Ф., Дворжак В., Целентис Ю.Повторное появление висцерального и кожного лейшманиоза на греческом острове Крит. Векторные зоонозные заболевания. 2012 г.; 12(3): 214–222. пмид:22217163
55. Нтаис П., Сифаки-Пистола Д., Христодулу В., Мессаритакис И., Пратлонг Ф., Пупалос Г., Антониу М. Лейшманиас в Греции. Am J Trop Med Hyg. 2013;89(5): 906–915. пмид:24062479

Массивы · Язык Julia

  hvncat(dim::Int, row_first, values...)
hvncat(dims::Tuple{Vararg{Int}}, row_first, values...)
hvncat(shape::Tuple{Vararg{Tuple}}, row_first, values...)

Горизонтальная, вертикальная и n-мерная конкатенация многих значений за один вызов.

Эта функция вызывается для синтаксиса блочной матрицы. Первый аргумент указывает либо форму конкатенации, аналогичную hvcat , в виде кортежа кортежей, либо размерности, определяющие ключевое число элементов вдоль каждой оси, и используется для определения выходных размерностей. Форма dims более производительна и используется по умолчанию, когда операция конкатенации имеет одинаковое количество элементов по каждой оси (т. г., [а б; компакт диск;;; е ; г ч]). Форма Форма используется, когда количество элементов по каждой оси не сбалансировано (например, [a b ; c]). Несбалансированный синтаксис требует дополнительных затрат на проверку. Форма dim представляет собой оптимизацию для конкатенации только по одному измерению. row_first указывает порядок значений . Значение первого и второго элементов формы также меняются местами на основе row_first .

Примеры

  julia> a, b, c, d, e, f = 1, 2, 3, 4, 5, 6
(1, 2, 3, 4, 5, 6)

юлия> [a b c;;; г д е]
Массив 1×3×2{Int64, 3}:
[:, :, 1] =
 1 2 3

[:, :, 2] =
 4 5 6

julia> hvncat((2,1,3), false, a,b,c,d,e,f)
Массив 2×1×3{Int64, 3}:
[:, :, 1] =
 1
 2

[:, :, 2] =
 3
 4

[:, :, 3] =
 5
 6

юлия> [а б;;; компакт диск;;; е е]
Массив 1×2×3{Int64, 3}:
[:, :, 1] =
 1 2

[:, :, 2] =
 3 4

[:, :, 3] =
 5 6

julia> hvncat(((3, 3), (3, 3), (6,)), true, a, b, c, d, e, f)
Массив 1×3×2{Int64, 3}:
[:, :, 1] =
 1 2 3

[:, :, 2] =
 4 5 6

Примеры построения аргументов:

[a b c ; д е ;;; г ч я ; к л ;;; м н о ; р к г ;;; с т у ; v w x] => dims = (2, 3, 4)

[a b ; в ;;; d ;;;;] ___ _ _ 2 1 1 = элементы в каждом ряду (2, 1, 1) _______ _ 3 1 = элементы в каждом столбце (3, 1) _____________ 4 = элементы в каждом 3d срезе (4,) _____________ 4 = элементы в каждом 4-м срезе (4,) => форма = ((2, 1, 1), (3, 1), (4,), (4,)) с rowfirst = true

Engineering сборки мозга для исследования нейронных цепей человека

1.
Winnubst, J. et al. Реконструкция 1000 проекционных нейронов выявила новые типы клеток и организацию связей дальнего действия в мозге мышей. Cell 179 , 268–281.e13 (2019).
КАС Статья Google Scholar

2.
Костович И., Радош М., Костович-Шрзентик М. и Крсник З. Основы развития связей в головном мозге плода человека на поздних сроках беременности: от 24 недель гестационного возраста до срока. Дж. Невропатол. Эксп. Нейрол. 80 , 393–414 (2021).
КАС Статья Google Scholar

3.
Кайзер Т. и Фэн Г. Моделирование психических расстройств для разработки эффективных методов лечения. Нац. Мед. 21 , 979–988 (2015).
КАС Статья Google Scholar

4.
Паска, С. П. Возникновение трехмерных культур человеческого мозга. Природа 553 , 437–445 (2018).
КАС Статья Google Scholar

5.
Веласко, С., Полсен, Б. и Арлотта, П. Трехмерные органоиды мозга: изучение развития мозга и болезней вне эмбриона. год. Преподобный Нейроски. 43 , 375–389 (2020).
КАС Статья Google Scholar

6.
Birey, F. et al. Сборка функционально интегрированных сфероидов переднего мозга человека. Природа 545 , 54–59 (2017).
КАС Статья Google Scholar

7.
Bagley, J. A., Reumann, D., Bian, S., Levi-Strauss, J. & Knoblich, J. A. Слитые церебральные органоиды моделируют взаимодействия между областями мозга. Нац. Методы 14 , 743–751 (2017).
КАС Статья Google Scholar

8.
Сян Ю.и другие. Слияние регионально определенных органоидов, происходящих из hPSC, моделирует развитие человеческого мозга и миграцию интернейронов. Cell Stem Cell 21 , 383–398.e7 (2017).
КАС Статья Google Scholar

9.
Sloan, S.A., Andersen, J., Pasca, A.M., Birey, F. & Pasca, S.P. Генерация и сборка трехмерных культур, специфичных для областей человеческого мозга. Нац. протокол 13 , 2062–2085 (2018).
КАС Статья Google Scholar

10.
Юн, С.-Дж. и другие. Надежность генерации корковых органоидов человека. Нац. Методы 16 , 75–78 (2019).
КАС Статья Google Scholar

11.
Miura, Y. et al. Генерация стриарных органоидов человека и кортико-стриарных ассемблоидов из плюрипотентных стволовых клеток человека. Нац.Биотехнолог. 38 , 1421–1430 (2020).
КАС Статья Google Scholar

12.
Шеперд, Г. М. Кортико-стриарная связность и ее роль в заболевании. Нац. Преподобный Нейроски. 14 , 278–291 (2013).
КАС Статья Google Scholar

13.
Welch, J.M. et al. Корково-полосатые синаптические дефекты и поведение, подобное ОКР, у мышей с мутацией Sapap3 . Природа 448 , 894–900 (2007).
КАС Статья Google Scholar

14.
Peca, J. et al. Мутантные мыши Shank3 демонстрируют поведение, подобное аутизму, и дисфункцию полосатого тела. Природа 472 , 437–442 (2011).
КАС Статья Google Scholar

15.
Милад, М. Р. и Раух, С. Л. Обсессивно-компульсивное расстройство: за пределами сегрегации корково-стриарных путей. Познание тенденций. науч. 16 , 43–51 (2012).
Артикул Google Scholar

16.
Шарма, А., Сансес, С., Воркман, М. Дж. и Свендсен, К. Н. Многолинейные платформы, полученные из ИПСК человека, для моделирования заболеваний и разработки лекарств. Cell Stem Cell 26 , 309–329 (2020).
КАС Статья Google Scholar

17.
Сян Ю.и другие. Таламические органоиды, происходящие из чЭСК, образуют реципрокные проекции при слиянии с корковыми органоидами. Cell Stem Cell 24 , 487–497.e7 (2019).
КАС Статья Google Scholar

18.
Andersen, J. et al. Генерация функциональных трехмерных кортико-моторных ассемблоидов человека. Cell 183 , 1913–1929.e26 (2020).
КАС Статья Google Scholar

19.
Чакир, Б. и др. Инженерия органоидов головного мозга человека с функциональной сосудистой системой. Нац. Методы 16 , 1169–1175 (2019).
КАС Статья Google Scholar

20.
Marton, R. M. et al. Дифференцировка и созревание олигодендроцитов в трехмерных нейронных культурах человека. Нац. Неврологи. 22 , 484–491 (2019).
КАС Статья Google Scholar

21.
Strano, A., Tuck, E., Stubbs, V.E. & Livesey, F.J. Различные результаты в нейронной дифференцировке человеческих PSC возникают из-за внутренних различий в сигнальных путях развития. Cell Rep. 31 , 107732 (2020).
КАС Статья Google Scholar

22.
Micali, N. et al. Вариации нервных стволовых клеток человека, генерирующих состояния организатора in vitro, прежде чем они перейдут к корковым возбуждающим или тормозным судьбам нейронов. Cell Rep. 31 , 107599 (2020).
КАС Статья Google Scholar

23.
Баттон, К. С. и др. Сбой питания: почему небольшой размер выборки подрывает надежность нейронауки. Нац. Преподобный Нейроски. 14 , 365–376 (2013).
КАС Статья Google Scholar

24.
Pasca, S.P. et al. Использование нейронов, полученных из иПСК, для выявления клеточных фенотипов, связанных с синдромом Тимоти. Нац. Мед. 17 , 1657–1662 (2011).
КАС Статья Google Scholar

25.
Tian, Y. et al. Изменение базальной и индуцированной деполяризацией транскрипционной сети в нейронах, происходящих из иПСК, при синдроме Тимоти. Геном Мед. 6 , 75 (2014).
Артикул Google Scholar

26.
Sun, Y. et al. Вредоносный Na _против 1.Мутация 1 избирательно повреждает тормозные нейроны конечного мозга, происходящие от пациентов с синдромом Драве. eLife 5 , e13073 (2016).
Артикул Google Scholar

27.
Susaki, E.A. et al. Визуализация всего мозга с разрешением одной клетки с использованием химических коктейлей и компьютерного анализа. Cell 157 , 726–739 (2014).
КАС Статья Google Scholar

28.
Тайнака, К. и др. Химический ландшафт для очистки тканей на основе гидрофильных реагентов. Cell Rep. 24 , 2196–2210.e9 (2018).
КАС Статья Google Scholar

29.
Klapoetke, N.C. et al. Независимое оптическое возбуждение отдельных нейронных популяций. Нац. Методы 11 , 338–346 (2014).
КАС Статья Google Scholar

30.
de Leeuw, C.N. et al. MiniPromoters, совместимые с rAAV, для ограниченной экспрессии в головном мозге и глазах. Мол. Мозг 9 , 52 (2016).
Артикул Google Scholar

31.
Chetty, S. et al. Простой инструмент для улучшения дифференцировки плюрипотентных стволовых клеток. Нац. Методы 10 , 553–556 (2013).
КАС Статья Google Scholar

32.
Исикава, Д. и др. Флуоресцентные пипетки для оптически направленных записей патч-клампа. Нейронная сеть. 23 , 669–672 (2010).
Артикул Google Scholar

Бешенство

Бешенство — вакциноуправляемая зоонозная вирусная болезнь. При появлении клинических симптомов бешенство практически на 100% заканчивается летальным исходом. В 99% случаев вирус бешенства передается человеку от домашних собак. Тем не менее, бешенство может поражать как домашних и диких животных.Он передается людям и животным через укусы или царапины, обычно через слюну.

Бешенство присутствует на всех континентах, кроме Антарктиды, при этом более 95% человеческих смертей происходит в регионах Азии и Африки. Бешенство является одной из забытых тропических болезней (ЗТБ), которая в основном поражает бедные и уязвимые слои населения, живут в отдаленных сельских местностях. Примерно 80% случаев заболевания людей происходят в сельской местности. Хотя существуют эффективные человеческие вакцины и иммуноглобулины от бешенства, они не всегда доступны для нуждающихся.Во всем мире смертность от бешенства составляет редко сообщается, и дети в возрасте от 5 до 14 лет являются частыми жертвами. Борьба с риском заражения бешенством, когда средняя стоимость постконтактной профилактики бешенства (ПКП) в настоящее время оценивается в среднем в 108 долларов США, может быть катастрофической. финансовое бремя для пострадавших семей, средний ежедневный доход которых может составлять всего 1-2 доллара США на человека ¹

Каждый год более 29 миллионов человек во всем мире получают вакцину после укуса. По оценкам, это позволяет ежегодно предотвращать сотни тысяч смертей от бешенства. Во всем мире экономическое бремя бешенства, передаваемого собаками, оценивается в 8,6 млрд долларов США в год.

Профилактика

Ликвидация бешенства у собак

Бешенство — болезнь, которую можно предотвратить с помощью вакцин. Вакцинация собак является наиболее экономически эффективной стратегией профилактики бешенства среди людей. Вакцинация собак снижает смертность от бешенства, передаваемого собаками, и потребность в ПКП как части ухода за больными, укушенными собаками.

Осведомленность о бешенстве и предотвращение укусов собак

Обучение поведению собак и предотвращению укусов как детей, так и взрослых является важным дополнением программы вакцинации против бешенства и может снизить как заболеваемость бешенством среди людей, так и финансовое бремя лечения укусов собак. Увеличение Осведомленность о профилактике и борьбе с бешенством в сообществах включает обучение и информацию об ответственном владении домашними животными, о том, как предотвратить укусы собак, и о мерах по немедленному уходу после укуса. Участие и право собственности на программу в сообществе уровень увеличивает охват и усвоение ключевых сообщений.

Иммунизация людей

Одна и та же вакцина используется для иммунизации людей после заражения (см. ПКП) или до заражения бешенством (реже). Предэкспозиционная иммунизация рекомендуется для людей, занимающихся определенными профессиями с высоким риском, таких как лабораторные работники, работающие с живыми бешенцами. и родственные бешенству (лиссавирусы) вирусы; и людей (таких как персонал по борьбе с болезнями животных и егерей), чья профессиональная или личная деятельность может привести к прямому контакту с летучими мышами, хищниками или другими млекопитающими, которые могут быть зараженный.

Предэкспозиционная иммунизация может быть показана также лицам, совершающим поездки на открытом воздухе, и экспатриантам, проживающим в отдаленных районах с высоким риском заражения бешенством и ограниченным местным доступом к биологическим препаратам против бешенства. Наконец, иммунизация также должна быть рассмотрена для детей. проживание или посещение таких районов. Когда они играют с животными, они могут получить более сильные укусы или могут не сообщать об укусах.

Симптомы

Инкубационный период бешенства обычно составляет 2–3 месяца, но может варьироваться от 1 недели до 1 года в зависимости от таких факторов, как место проникновения вируса и вирусная нагрузка.Начальные симптомы бешенства включают лихорадку с болью и необычными или необъяснимыми ощущение покалывания, покалывания или жжения (парестезия) в месте раны. По мере распространения вируса в центральную нервную систему развивается прогрессирующее и фатальное воспаление головного и спинного мозга.

Существуют две формы заболевания:

Бешеное бешенство проявляется признаками гиперактивности, возбудимого поведения, водобоязни (боязнь воды) и иногда аэрофобии (боязнь сквозняков или свежего воздуха).Смерть наступает через несколько дней из-за сердечно-дыхательной остановки.

Паралитическое бешенство составляет около 20% от общего числа случаев заболевания человека. Эта форма бешенства протекает менее драматично и обычно более продолжительно, чем буйная форма. Мышцы постепенно парализуются, начиная с места укуса или царапины. Медленно развивается кома, и в конце концов наступает смерть. Паралитическая форма бешенства часто диагностируется неправильно, что способствует занижению сведений о заболевании.

Диагностика

Существующие диагностические инструменты не подходят для выявления инфекции бешенства до начала клинического заболевания, и при отсутствии характерных для бешенства признаков гидрофобии или аэрофобии клиническая диагностика может быть затруднена.Бешенство человека может быть подтвержденный прижизненно и посмертно с помощью различных диагностических методов, которые обнаруживают целые вирусы, вирусные антигены или нуклеиновые кислоты в инфицированных тканях (мозг, кожа или слюна) ²

Передача

Люди обычно заражаются после глубокого укуса или царапины от животного, больного бешенством, а на передачу человеку от бешеных собак приходится до 99% случаев.

В Северной и Южной Америке летучие мыши в настоящее время являются основным источником смерти людей от бешенства, поскольку в этом регионе передача инфекции через собак в основном прекратилась.Бешенство летучих мышей также представляет собой новую угрозу общественному здравоохранению в Австралии и Западной Европе. Смерти людей после воздействия лисы, еноты, скунсы, шакалы, мангусты и другие виды диких хищников очень редки, а укусы грызунов, как известно, не передают бешенство.

Передача также может происходить при прямом контакте слюны инфицированных животных со слизистой оболочкой человека или свежими кожными ранами. Описано заражение бешенством при вдыхании вирусосодержащих аэрозолей или при трансплантации инфицированных органов, но крайне редко.Передача от человека к человеку через укусы или слюну теоретически возможна, но никогда не подтверждалась. То же самое относится к передаче человеку через потребление сырого мяса или молока инфицированных животных.

Постконтактная профилактика (ПКП)

Постконтактная профилактика (ПКП) — это немедленная помощь пострадавшему от укуса после контакта с бешенством. Это предотвращает проникновение вируса в центральную нервную систему, что приводит к неминуемой смерти. ПКП включает:

Обширное промывание и местное лечение укушенной раны или царапины как можно скорее после предполагаемого воздействия;
курс сильнодействующей и эффективной вакцины против бешенства, соответствующей стандартам ВОЗ; и
введение антирабического иммуноглобулина (RIG) по показаниям.

Начало лечения вскоре после контакта с вирусом бешенства может эффективно предотвратить появление симптомов и смерть.

Обширное промывание раны

Эта мера первой помощи включает немедленное и тщательное промывание раны в течение как минимум 15 минут водой с мылом, детергентом, повидон-йодом или другими веществами, удаляющими и убивающими вирус бешенства.

Риск контакта и показания для ПКП

В зависимости от тяжести контакта с животным с подозрением на бешенство, рекомендуется следующий полный курс ПКП:

Таблица: Категории контактов и рекомендуемая постконтактная профилактика (PEP)

Категории контакта с подозреваемым бешеным животным	Постконтактная профилактика меры	+	+	+
90 493 Категория I — прикосновение или кормления животных, облизывание животных на неповрежденной коже (без воздействия) +	Промывки открытых поверхностей кожи, отсутствие РЕРА
Категория II — откусывание крошки Эд кожи, незначительные царапины или ссадины без кровотечения (экспозиция)	рана моющейся и немедленной вакцинации

категория III — Одиночные или несколько трансдермальных укусов или царапин, загрязнение слизистой оболочки или сломаны кожа со слюной от облизываний животных, воздействие при прямом контакте с летучими мышами (тяжелое воздействие)	Промывание ран, немедленная вакцинация и введение антирабического иммуноглобулина			поскольку они несут риск развития бешенства, требуется ПКП. Этот риск увеличивается, если: кусающий млекопитающий является известным резервуаром или переносчиком бешенства воздействие происходит в географическом районе, где бешенство все еще присутствует животное выглядит больным или проявляет ненормальное поведение рана или слизистая оболочка загрязнена слюной животного укус неспровоцирован животное не вакцинировано. Статус вакцинации подозреваемого животного не должен быть решающим фактором при рассмотрении вопроса о начале ПКП или отказе от нее, если статус вакцинации животного вызывает сомнения.Это может быть в том случае, если программы вакцинации собак недостаточно регулируются или выполняются из-за нехватки ресурсов или низкого приоритета. ВОЗ продолжает пропагандировать профилактику бешенства среди людей путем ликвидации бешенства у собак, стратегий предотвращения укусов собак и более широкого использования внутрикожного пути введения ПКП, что сокращает объем и, следовательно, стоимость клеточно-культуральной вакцины на 60-80%. Комплексное ведение случаев укусов Если возможно, ветеринарные службы должны быть предупреждены, укусившее животное должно быть выявлено, удалено из сообщества и либо помещено на карантин для наблюдения (для здоровых собак и кошек), либо отправлено для немедленного лабораторного исследования (мертвое или усыпленное животные с клиническими признаками бешенства).ПКП следует продолжать в течение 10-дневного периода наблюдения или в ожидании результатов лабораторных исследований. Лечение может быть прекращено, если животное не заражено бешенством. Если подозрительное животное не может быть захвачены и проверены, то следует пройти полный курс ПКП. Рекомендуется совместное отслеживание контактов ветеринарными службами и службами здравоохранения для выявления дополнительных животных с подозрением на бешенство и жертв человеческих укусов с целью применения профилактических мер. меры соответственно. Ответ ВОЗ Бешенство включено в новую дорожную карту ВОЗ на 2021-2030 гг. Поскольку это зоонозное заболевание, оно требует тесной межсекторальной координации на национальном, региональном и глобальном уровнях. ВОЗ, ФАО (Продовольственная и сельскохозяйственная организация) и МЭБ (Всемирная организация по охране здоровья животных) определили приоритетность борьбы с бешенством в рамках подхода «Единое здоровье» и запустили «Форум объединенных действий против бешенства» (UAR), многостороннюю платформу. UAR поддерживает и определяет приоритетность инвестиций в борьбу с бешенством и координирует глобальные усилия по ликвидации бешенства для достижения нулевой смертности людей от бешенства, передаваемого собаками, к 2030 г. Прогресс в ликвидации бешенства является индикатором введения в действие программы One Health. и укрепление систем охраны здоровья людей и животных. Борьба с бешенством может внести значительный вклад в наращивание потенциала за пределами структур здравоохранения и разрозненного понятия здоровья, а также продемонстрировать, что «Единое здоровье» действительно может обеспечить основу, в которой могут быть реализованы и разделены сквозные преимущества. ВОЗ работает с партнерами, чтобы направлять и поддерживать страны в процессе разработки и реализации своих национальных планов ликвидации бешенства ВОЗ регулярно обновляет и распространяет технические руководства по бешенству ³ , например, по эпидемиологии, эпиднадзору, диагностике, вакцинам, безопасности и стоимости -эффективная иммунизация ⁴ , стратегии контроля и профилактики и бешенство животных, реализация оперативной программы ⁵ ; и паллиативная помощь людям, больным бешенством На пути к элиминации бешенства страны могут запросить у ВОЗ подтверждение достижения нулевой смертности людей от бешенства, опосредованного собаками ³ ; добиваться одобрения МЭБ своих программ по борьбе с бешенством у собак и самопровозглашать свободу от собачьего бешенства. бешенство ⁶ ; Мексика стала первой страной, которая в 2019 г. прошла валидацию ВОЗ на устранение случаев смерти людей от бешенства, передаваемого собаками ВОЗ уделяет приоритетное внимание и укрепляет глобальное движение к достижению всеобщего охвата услугами здравоохранения В 2019 году Гави включил человеческие вакцины против бешенства в свою стратегию инвестиций в вакцины на 2021–2025 годы, которая будет поддерживать расширение ПКП против бешенства в странах, отвечающих требованиям Гави. Его развертывание было прервано из-за Covid-19. ВОЗ продолжит консультировать по оптимальным стратегиям и методы ее развертывания в странах, запрашивающих вакцину против бешенства. Мониторинг программ по борьбе с бешенством и эпиднадзор за болезнями необходимы для измерения воздействия, повышения осведомленности и адвокации. Дорожная карта NTD 2030 – это руководящий документ для глобальных ответных мер на NTD в течение следующего десятилетия, который включает региональные, прогрессивные цели по элиминации бешенства ⁷ начните с малого, активизируйте местные программы по борьбе с бешенством с помощью пакетов стимулов, продемонстрируйте успех и рентабельность и обеспечьте участие правительств и пострадавших сообществ. Ликвидация бешенства требует адекватных и долгосрочных инвестиций. Демонстрация местных успехов и повышение осведомленности о бешенстве доказали свою эффективность для завоевания и поддержания политической воли. ————————————— Женщина из Южного Милуоки только что воссоединилась с потерявшейся кошкой перед Рождеством Дебби Ауэр каждый вечер в течение двух месяцев хватала свою большую синюю тканевую «сумку для кошачьего патруля», чтобы около полуночи бродить по улицам Южного Милуоки в поисках пропавшей кошки Китти. Грелки для рук, лакомства для кошек, дополнительные перчатки и баллончик с перцовым баллончиком от ее мужа Фрэнка наполнили сумку. Ауэр сказала, что кошки часто были наиболее подвижны ночью, поэтому она искала их несколько часов, а затем возвращалась домой, чтобы немного поспать. Ауэр сказала, что «было страшно» выходить так поздно, но она никогда не пропускала ночь. Иногда она снова уходила на следующее утро. Франк Ауэр сказал, что через несколько месяцев потерял надежду. «Я был готов бросить это дело, но Деб не стала», — сказал он.«Она и другие настаивали на том, чтобы не сдаваться». Подробнее: ‘Рождественское чудо’: кошка Ваукеша возвращается домой после пропажи в октябре Подробнее: Ветеринар Милуоки в детстве любил «Все существа, большие и малые». Теперь она повторяет серию, навещая животных. Недавно Дебби Ауэр смогла выспаться впервые за несколько месяцев, потому что 20 декабря произошло рождественское чудо: Китти и Дебби воссоединились. «Это было похоже на сон, как будто я была в тумане», — сказала Дебби Ауэр.«Я был так счастлив. Это чудо, особенно со всеми койотами вокруг». После нескольких недель, когда его никто не видел, Китти начал появляться в этом районе, и сосед прислал фотографии кота, похожего на него, через Facebook Messenger. Дебби Ауэр сказала, что пыталась поймать его, но он испугался. «Я была связана и решительно настроена», — сказала она. Переноска для кошек в одной руке и свежий тунец в другой, Дебби Ауэр установила переноску с тунцом внутри и спряталась поблизости. Китти вошел в коляску, и, когда он попытался выбежать, дверь «споткнулась», и его поймали. Супруги впервые спасли Китти из Общества защиты животных Это был не первый раз, когда Ауэры спасали своего пушистого члена семьи. Китти — 9,5-летний ситцевый черно-белый домашний кот, которого пара спасла из Висконсинского общества защиты животных, когда он был еще котенком. Там он был известен как «Могучий мышонок», но семья Ауэров не была в восторге от этого имени. Придумывая нового, они называли его просто Китти, и в конце концов это прижилось. До того как он вышел — Ауэры до сих пор не знают, как это случилось, — Кити ни разу не выходила из дома.Дебби Ауэр сказала, что ее муж был на севере 22 октября, и она ушла из дома, чтобы присмотреть за внуками. Когда она пришла домой, Китти там не было. Франк Ауэр сказал, что они сделали ламинированные листовки и «облепили (их) полностью». Он вышел на пенсию и сказал, что его жена не работает, поэтому они сделали поиск Китти «высшим приоритетом». — Мы действительно вложили в это свою жизнь, — сказал он. Ауэры расклеили листовки в Южном Милуоки, Оук-Крик и Кудахи. Они также положили 400 каталожных карточек в местные почтовые ящики. Дебби Ауэр оставила лоток Китти на крыльце и перебросила одежду через забор в надежде, что Китти сможет почувствовать запах. Кроме того, каждую неделю она проверяла Комиссию по контролю за домашними животными Милуоки и Общество защиты животных. Фрэнк Ауэр сказал, что расположенный в Милуоки некоммерческий приют для животных Second Hand Purrs был очень полезным и мотивировал их искать Китти и надеяться. Всего у Ауэров около дюжины сведений о местонахождении Китти. «Я хочу поблагодарить всех за помощь и наводки, — сказала Дебби Ауэр. Однако в итоге они получили гораздо больше, чем просто зацепки. Пара нашла много страстных владельцев домашних животных, готовых помочь, и завела новых друзей. Фрэнк Ауэр сказал, что в районе, где была найдена Китти, на лесистом склоне холма, «у кошек есть свобода действий», и они «в некоторой степени защищены и накормлены». «Есть подполье людей, которых я никогда не знал, которые заботятся об этих кошках», — сказал он. Примерно за четыре дня до воссоединения Ауэры поставили свою рождественскую елку.Это было трудно, потому что это всегда было «дерево Китти», — сказала Дебби Ауэр. «Он всегда спит под ним», — сказала она. «Он мяукал и звал дерево, когда мы его срубали». Супруги наконец-то решили поставить елку для своих внуков. Они и не подозревали, что Китти тоже сможет насладиться этим. Фрэнк Ауэр сказал, что детское Рождество стало более волшебным, когда Китти вернулась домой. «(Китти) сильно похудел, и ему нужно приспособиться», — сказала Дебби Ауэр. «Мы сразу же отвезли его к ветеринару, и, слава богу, он был в порядке.Мы все еще заставляем его набирать вес. Я просто надеюсь, что он больше никогда не выберется». Свяжитесь с Эриком С. Хэнли по телефону (262) 875-9467 или по электронной почте [email protected]. Поставьте лайк его странице в Facebook и подпишитесь на него в Twitter @ES_Hanley. Наши подписчики делают это сообщение возможным. Пожалуйста, поддержите местную журналистику, подписавшись на Journal Sentinel на jsonline.com/deal. Тоска, самый модный магазинный кот Сан-Франциско, становится вирусным в Твиттере На фотографии щеголеватый кот в смокинге сидит на табурете, а на заднем плане аккуратно разложены бутылки вермута и немного бальзама для губ.Кот, о котором идет речь: Тоска, 8-летняя кошка из магазина Nabila’s Naturals в районе Хейс-Вэлли в Сан-Франциско. «О Боже, она становится знаменитостью, эта», — сказал Рамиз Юсеф, который владеет и управляет магазином вместе со своей женой Еленой Риос. Есть стайка любимых местных магазинных кошек, и большинство жителей Сан-Франциско заявляют о своей верности единственному кошачьему другу. Но этот уровень славы ощущается немного по-другому — и все благодаря ее очаровательному маленькому галстуку-бабочке. Она стала чем-то вроде интернет-знаменитости с тех пор, как это ее изображение, опубликованное в воскресенье, стало вирусным в Твиттере, собрав более 120 000 лайков менее чем за два дня. нашел этого причудливого кота в винном магазине Сан-Франциско. pic.twitter.com/JVga3rmbyX — Более счастливый день (@AHappierDay) 2 января 2022 г. По словам Риоса, Тоске около 8 или 9 лет, и ее впервые усыновили в 2016 году. Она рассказала, как они с Юсефом впервые встретились с Тоской — очаровательной и дерзкой женщиной, которая даже сидела в своей маленькой клетке в приюте для животных.(Если вам интересно, ее имя взято из либретто Пуччини. Юсеф и Риос решили не менять ее имя, почувствовав, что оно ей очень подходит.) Тоска лежит на коробке Modelo. Предоставлено Еленой Риос «Мы достигли Тоски… и попытались перейти к следующей, к следующей клетке», — сказал Риос SFGATE. «Она действительно разозлилась, и она сделала, например, [шипящий звук] на Рамиза, и как только она это сделала, мой муж понял, что это она. Это был особенный момент.” И за более чем пять лет, прошедших с тех пор, как она сделала Набилу своим домом, всегда общительная Тоска очаровала многих покупателей — и даже некоторых непокупателей, которые приходят просто, чтобы сфотографироваться и провести с ней некоторое время. — Она очень общительная девушка, — сказал Риос. «Она любит приветствовать клиентов и быть среди людей, а иногда зависать за прилавком и наблюдать за происходящим — что происходит, кто что получает. Тоска, пошутил Риос, даже просто встанет у двери, прислуживая любому, кто войдет в ее владения естественной пищей. «Иногда она стоит у двери и протягивает лапки, и все, знаете ли, она останавливает движение перед дверью», — сказал Риос. Тоска. Предоставлено Еленой Риос Что касается галстуков-бабочек? Риос говорит, что их меняют сезонно, в зависимости от праздников, а иногда и настроения Тоски. По словам Риоса, когда ей надоедает ошейник, она становится суетливой — угрюмо расхаживает вокруг, пока его не поменяют.(У нее даже есть платье, которое она надевает по особым случаям, как сказал Риос.) И Риос, и Юсеф в восторге от того, что их «маленькое домашнее дитя» получает столько любви в Интернете. No related posts. alexxlab Навигация по записям Пред. След. Разное Как часто можно делать клизму грудничку: рекомендации педиатров alexxlab 22.11.2024 0 Разное Почему новорожденный не спит ночью: 11 главных причин и способы решения проблемы alexxlab 19.11.2024 0 Разное Как успокоить плачущего ребенка: 10 эффективных способов alexxlab 16.11.2024 0 Разное Что нужно новорожденному на первое время: полный список необходимых вещей alexxlab 14.11.2024 0 Разное Пеленки для новорожденных: виды, размеры и способы использования alexxlab 13.11.2024 0 Разное Детская кроватка для новорожденного: как правильно выбрать alexxlab 10.11.2024 0 Добавить комментарий Отменить ответ Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены * Комментарий * Имя * Email * Сайт Архивы Ноябрь 2024 Октябрь 2024 Ноябрь 2021 Октябрь 2021 Сентябрь 2021 Август 2021 Июль 2021 Июнь 2021 Май 2021 Апрель 2021 Март 2021 Февраль 2021 Январь 2021 Декабрь 2020 Ноябрь 2020 Октябрь 2020 Сентябрь 2020 Август 2020 Июль 2020 Июнь 2020 Май 2020 Апрель 2020 Март 2020 Февраль 2020 Январь 2020 Декабрь 2019 Ноябрь 2019 Октябрь 2019 Сентябрь 2019 Август 2019 Июль 2019 Июнь 2019 Май 2019 Апрель 2019 Март 2019 Февраль 2019 Январь 2019 Декабрь 2018 Ноябрь 2018 Октябрь 2018 Сентябрь 2018 Август 2018 Июль 2018 Июнь 2018 Май 2018 Апрель 2018 Март 2018 Февраль 2018 Январь 2018 Февраль 1988 Январь 1988 Декабрь 1987 Ноябрь 1987 Октябрь 1987 Сентябрь 1987 Август 1987 Июль 1987 Июнь 1987 Май 1987 Апрель 1987 Март 1987 Февраль 1987 Январь 1987 Декабрь 1986 Ноябрь 1986 Октябрь 1986 Сентябрь 1986 Август 1986 Июль 1986 Июнь 1986 Май 1986 Апрель 1986 Март 1986 Февраль 1986 Январь 1986 Декабрь 1985 Ноябрь 1985 Октябрь 1985 Сентябрь 1985 Август 1985 Июль 1985 Июнь 1985 Май 1985 Апрель 1985 Март 1985 Февраль 1985 Январь 1985 Декабрь 1984 Ноябрь 1984 Октябрь 1984 Сентябрь 1984 Август 1984 Июль 1984 Июнь 1984 Май 1984 Апрель 1984 Март 1984 Июнь 1982 Май 1982 Апрель 1982 Март 1982 Февраль 1982 Январь 1982 Декабрь 1981 Ноябрь 1981 Октябрь 1981 Сентябрь 1981 Август 1981 Июль 1981 Июнь 1981 Май 1981 Апрель 1981 Март 1981 Февраль 1981 Январь 1981 Декабрь 1980 Ноябрь 1980 Октябрь 1980 Сентябрь 1980 Август 1980 Июль 1980 Июнь 1980 Май 1980 Апрель 1980 Март 1980 Февраль 1980 Январь 1980 Декабрь 1979 Ноябрь 1979 Октябрь 1979 Сентябрь 1979 Август 1979 Июль 1979 Июнь 1979 Май 1979 Апрель 1979 Март 1979 Февраль 1979 Январь 1979 Декабрь 1978 Ноябрь 1978 Октябрь 1978 Сентябрь 1978 Август 1978 Июль 1978 Июнь 1978 Май 1978 Апрель 1978 Март 1978 Февраль 1978 Январь 1978 Декабрь 1977 Ноябрь 1977 Октябрь 1977 Сентябрь 1977 Август 1977 Июль 1977 Июнь 1977 Май 1977 Апрель 1977 Март 1977 Февраль 1977 Январь 1977 Декабрь 1976 Ноябрь 1976 Октябрь 1976 Сентябрь 1976 Август 1976 Июль 1976 Июнь 1976 Май 1976 Апрель 1976 Март 1976 Февраль 1976 Январь 1976 Декабрь 1975 Ноябрь 1975 Октябрь 1975 Сентябрь 1975 Август 1975 Июль 1975 Июнь 1975 Май 1975 Апрель 1975 Март 1975 Февраль 1975 Январь 1975 Декабрь 1974 Ноябрь 1974 Октябрь 1974 Сентябрь 1974 Август 1974 Июль 1974 Июнь 1974 Май 1974 Апрель 1974 Март 1974 Февраль 1974 Январь 1974 Декабрь 1973 Ноябрь 1973 Октябрь 1973 Сентябрь 1973 Август 1973 Июль 1973 Июнь 1973 Май 1973 Апрель 1973 Март 1973 Февраль 1973 Январь 1973 Декабрь 1972 Ноябрь 1972 Октябрь 1972 Сентябрь 1972 Август 1972 Июль 1972 Июнь 1972 Май 1972 Апрель 1972 Март 1972 Февраль 1972 Январь 1972 Декабрь 1971 Ноябрь 1971 Октябрь 1971 Сентябрь 1971 Август 1971 Июль 1971 Июнь 1971 Май 1971 Апрель 1971 Март 1971 Февраль 1971 Январь 1971 Декабрь 1970 Ноябрь 1970 Октябрь 1970 Сентябрь 1970 Август 1970 Июль 1970 Июнь 1970 Май 1970 Апрель 1970 Март 1970 Февраль 1970 Январь 1970 Рубрики Вдохновение Дизайн Иллюстратор Плагины Разное Советы Уроки Фотошоп Primelens.ru © 2019